发明领域

本发明是关于一种用于提取来自生物材料如动物组织或生物液体中 朊病毒蛋白的方法。这种提取方法使有可能测定异常朊病毒蛋白的存在， 例如用于诊断传染性海绵状脑炎。

                       发明背景

朊病毒病或传染性海绵状脑炎(TSE)引起中枢神经系统渐进的退 化性病症而导致死亡(Prusiner，医学研究述评，16：487，1996；Weissman， FEBS通讯，289：3，1996)。200多年前首次描述了绵羊TSE病，瘙 痒病(Pattison，兽医研究，123：661，1988)。瘙痒病是这类疾病的原 型。对这类疾病还没有已知的治疗方法，也不知道在动物死亡之前如何 检测是否存在这种疾病。朊病毒病是由于宿主正常朊病毒蛋白的构象改 变成为形成聚集体的异常结构而引起的。因为最近在英国爆发流行牛海 绵状脑炎，以及这种TSE与其新的变异形式，一种人TSE病Creutzfeld -Jakob相关联(Bruce等，自然，389：498，1997)，所以需要有可 灵敏和准确诊断TSEs的新方法。理想地是，这种诊断方法可以在动物 显示出临床病征之前，并且在它们进入人类食物链或成为人用药物制品 之前用于对动物进行检查。 对现有技术的描述

用于制备和纯化TSE致病性作用物的方法大多数都包括酶和去污剂 处理以及离心处理的复杂程序(Bolten等，病毒学杂志，53：596，1985)。 异常的朊病毒蛋白质在通常的生物缓冲液中可溶性很差。用于获得纯化 异常朊病毒蛋白的一种方法是亲水性相互作用层析法(HILIC)(Plpert， J，层析，499：177，1990)，此方法是反相层析法的逆转形式。通常是 以70-85％的有机溶剂开始，对逐渐降低的有机梯度液进行层析。按照 从最小极性到最大极性的顺序进行洗脱。HILIC的大部分有机移动相与 游离在水性溶液中非正常存在的蛋白质是相容的，例如膜蛋白(Jeno等， 动物生物化学，215：292，1993)，β-淀粉状蛋白肽(1-43)(Alpert 等，蛋白质学会第八届讨论会，1994年7月，圣地亚哥，CA)和组蛋 白(Lindner等，层析学杂志，A.782：55，1997)。表面活性剂和其它 的变性剂都是在外水体积或者接近外水体积中被洗脱，而蛋白质和肽一 般被良好地保留。

通过HILIC纯化之后，可应用毛细管电泳免疫测定法(Schmerr和 Jenny，电泳，19：409，1998)或者通过毛细管等电聚集法(Schmerr 等，层析学杂志，A.802：135，1998)检测朊病毒蛋白。

如上面所提到的，一般是在动物死亡之后应用这些分析方法检测异 常朊病毒蛋白，因此需要在动物死亡前检测异常朊病毒蛋白。此外，还 需要一种不借助于超离心步骤分离异常朊病毒蛋白的方法，超离心所需 的仪器设备对于兽医诊断实验室是不易获得的。离心要求异常朊病毒蛋 白以聚集体的形式存在，它的大尺寸有助于在离心管内形成沉淀。但在 随后的步骤中这种聚集体很难被溶解和检测。应用离心法还有可能检测 单体的异常朊病毒蛋白，而可能降低任何测定法的灵敏度。现在更加紧 迫地需要快速、可靠的野外检测法，例如定性的免疫检测法，以便检测 家畜是否感染了TSE。因此，本领域需要有一种简便有效的方法用于提 取异常朊病毒蛋白。

另外，除了对天然异常朊病毒蛋白产生的抗体之外，其余已产生的 抗体是针对单体形式的异常朊病毒蛋白(Korth等，自然，390：74，1997)。 从而必须用强去污剂或变性剂使异常朊病毒蛋白解聚集，然后在实施大 多数免疫检测法之前又必须除去这些变性剂。因此，本领域需要有一种 快速简便的方法，提取出与去污剂或变性剂分离的朊病毒蛋白用于免疫 测定法分析。

本发明提供了一种新颖的方法，用于提取所有大小的异常朊病毒蛋 白，不论是聚集体形式或单体形式的异常朊病毒蛋白。本发明使之有可 能应用例如免疫测定法检测来自活动物样品中的异常朊病毒蛋白。例如， 可根据血液样品进行诊断，这将便于检测活的动物，有助于从禽群和畜 群中除去感染的动物，防止有可能污染消费产品。

                       发明概述

本发明提供了一种方法，用于从怀疑含有异常朊病毒蛋白的生物材 料中提取异常朊病毒蛋白。此方法包括在可从生物材料中有效地提取异 常朊病毒蛋白进入提取溶剂的条件下，温育提取溶剂与等渗或低渗的生 物材料水制备物的混合液。该提取溶剂是异常朊病毒蛋白可溶于其中的 一种极性有机溶剂，并且它与低渗或等渗的水溶液是可混溶的，但与感 胶离子(lyotropic)水溶液是不混溶的。可使该混合物的感胶离子活性 增加，以致使提取溶剂分离成与生物材料水制备物截然不同的相，从而 形成含有来自生物材料的任何异常朊病毒蛋白的提取溶剂。

本发明还进一步提供了检测动物中是否存在异常朊病毒蛋白的方 法，包括对如上所述制备分离的提取溶剂测定其中的异常朊病毒蛋白。

还提供了一种试剂盒，用于分离来自生物样品中的异常朊病毒蛋白。 此试剂盒包括一种具有上述特征的提取溶剂和一种感胶离子盐或感胶离 子盐水溶液，此盐或其水溶液将被加入生物样品的水制备物中，致使该 有机溶剂变成与此水制备物不能混溶。在本发明的另一实施方案中，该 试剂盒包括一种对朊病毒蛋白的检测法，优选地是用于异常朊病毒蛋白 的检测法。

因此，本发明的目标是提供一种从生物样品中分离异常朊病毒蛋白 的快速方法。

本发明还有一个目标是对感染了异常朊病毒蛋白的生物体提供一种 早期检测法。

本发明的进一步目标是提供一种溶剂提取技术，用于从生物样品中 分离异常朊病毒蛋白。

本发明还有另一目标是简化对来自动物或人的生物材料中是否存在 异常朊病毒蛋白的分析测定。

本发明还有一个目标是为进一步测定或纯化提供含有异常朊病毒蛋 白的提取物。

在本发明的附图和详述中将更加详细地呈现本发明的这些目标或另 一些目标。

附图简述

图1，通过放射活性(圆圈)和通过在280nm的吸光度(实线)检 测得到的125I-朊病毒蛋白的HILIC层析图谱。

图2，125I-朊病毒蛋白的HILIC级分的抗体结合。

                       发明详述

本发明提供了一种用于从生物材料中提取异常朊病毒蛋白的方法。 借助于免疫测定法可检测此被提取产品中的异常朊病毒蛋白。这种异常 朊病毒蛋白的提取方法连同一种免疫测定法，可用于诊断活生物体是否 感染了TSE，并且将可用于在全世界检测TSE感染的动物和人。因此， 本发明促使在缺乏昂贵离心机的临床和兽医实验室有可能进行朊病毒蛋 白检测，并进一步使之有可能在野外进行检测。

将生物材料的水制备物与提取溶剂合并形成混合物。此提取溶剂是 异常朊病毒蛋白可溶于其中的极性有机溶剂，并且此溶剂与非感胶离子 等渗水溶剂混溶，但与感胶离子水溶液不可混溶。在特别优选的实施方 案中，此提取溶剂是六氟-2-丙醇(也被称为六氟异丙醇或HFIP)。 虽然在下面的实施例中提取缓冲液体积和生物材料水制备物的体积是大 致相等，但是如在下面所述的，可以使用能形成不同两相的任何比例。

在优选的实施方案中，是在大约20℃-100℃的温度范围内温育该 混合物。尽管如此，使提取溶剂和生物材料的水制备物都处于同一液相 中的任何温度，即冰点与沸点之间的温度都可以使用。

在可有效地将来自生物材料中的异常朊病毒蛋白提取进入提取溶剂 的条件下温育该提取溶剂-生物材料混合物。温育之后，增加该混合物 的感胶离子活性，致使提取溶剂与水制备物分离开。可从生物材料的水 制备物中分离出含有朊病毒蛋白的提取溶剂。

按照本发明，通过加入感胶离子盐可增加提取溶剂-水制备物的感 胶离子活性。这种盐可作为固体被直接加入混合物，或者作为浓缩的水 溶液被加入。感胶离子盐的优选实例包括硫酸钠和硫酸铵。在下面例证 性的特定实施方案中，是通过以大约1∶1的比例(体积/体积)将0.5M 硫酸钠加入混合物中来增加其离子强度。

因为不需要从尸体解剖检查获得材料所以本发明特别方便。按照本 发明，生物材料可以是来自活动物的样品。本发明的方法提供从生物液 体或器官活组织检查材料提取异常朊病毒蛋白用于分析测定。另一方面， 可以从例如某些动物产品的尸体解剖检查获得生物材料，这些动物产品 将被用于食品、药物、化妆品、或者为人或其它动物使用的其它产品。 在进一步的实施方案中，可将本发明的方法用于从这些材料中除去朊病 毒蛋白，以便确保感染性朊病毒不被传播。

本发明的提取方法既可用于提取正常的朊病毒蛋白又可用于提取异 常的朊病毒蛋白。通过用蛋白酶-K预处理生物材料，正常朊病毒蛋白 可被消化。因此，当只需要异常朊病毒蛋白时，可以在与提取溶剂混合 之前先用蛋白酶-K预处理生物材料的水制备物。

可将含有任何朊病毒蛋白的提取液干燥而形成提取物干块。借助于 例如亲水性相互作用层析法可将溶液中或提取物干块中的朊病毒蛋白进 一步纯化。

通过测定分离的提取物干块材料，可检测动物中是否存在异常朊病 毒蛋白。该测定法优选地是一种对异常朊病毒蛋白的免疫测定法。可在 分离朊病毒蛋白之前用蛋白酶-K处理样品，致使不会分离出正常朊病 毒蛋白。

另一方面，本发明提供了用于从生物样品中分离异常朊病毒蛋白的 试剂盒。在一个实施方案中，此试剂盒包含提取溶剂例如六氟-2-丙醇。 该试剂盒另外还包含感胶离子盐或感胶离子盐的水溶液，用于加入生物 样品水制备物中致使提取溶剂变成与水制备物不混溶。

本发明还进一步提供了一种试剂盒用于检测是否存在来自生物样品 的异常朊病毒蛋白。除了上述的试剂盒成分之外，此检测试剂盒还包括 用于异常朊病毒蛋白的检测法。用于检测异常朊病毒蛋白是否存在的优 选检测法是免疫测定法。

虽然此提取法和试剂盒已被发展主要用于诊断瘙痒病(绵羊TSE)， 但是它们也可用于诊断其它脊椎动物的TSE，特别是哺乳动物和鸟类， 例如人、牛、猪、麋鹿、鹿、家禽和啮齿动物。早在感染后2周就可以 在动物和人的组织中检测出异常朊病毒蛋白。本发明方法的一个重要应 用是检测人血液中的异常朊病毒蛋白。此项技术还可用于从待加工原料 中提取异常朊病毒蛋白，这些原料将被用于生产人用药物或打算人用的 其它产品，包括食品添加物。

如在此所使用的名词“大约”或“大致”意指在所给定值或范围的 20％之内，优选地在10％之内，而更优选地在5％之内。 生物材料

本发明使之有可能从生物材料中提取朊病毒蛋白。如上面论述的， 通常发现朊病毒蛋白存在于脊椎动物中。因此在大多数情况下生物材料 来自动物或人类。在真核细胞的发酵过程中也可以产生朊病毒蛋白。它 可作为重组朊病毒蛋白被表达。具有较大意义的是，已被重组修饰表达 另一种蛋白的细胞可能偶尔地表达内源性朊病毒蛋白。如果是神经来源 的细胞如PC12细胞，则很可能发生这种可能性。在这种情况下，生物 材料可以是发酵产物例如重组蛋白质。

来自动物的生物材料实例包括但决不是局限于组织如脑、肌肉(包 括心脏)、肝、盲肠、胰腺、胃肠道器官和皮肤组织，以及淋巴样组织 如胸腺、脾、扁桃腺和淋巴结等。另一方面，生物材料也可以是生物液 体。名词生物液体意指脑脊液、血液、血清、血浆、乳液、尿、唾液、 眼泪、粘液分泌物、汗水、精液以及含有这些成分的体液。它还意指用 于产生重组蛋白质的培养液(或培养基)，或者移植前悬液中所包含的 细胞。被名词“生物材料”包含的还有由动物器官或组织制成的产品， 包括血清蛋白(如白蛋白和免疫球蛋白)、激素、食品和加工的食物产 品、营养添加物、骨粉、动物饲料、细胞外基质蛋白、胶原蛋白以及用 于制造食品或用作最后食品的其它一些动物副产品。

当生物材料是固体组织或固体产物时，必须首先使它溶解或混悬于 水溶液，以致使它适合于该提取过程。例如，以重量对体积10％的比例 将脑组织混悬于蔗糖液中(例如0.32M蔗糖液)。其它的低渗液或等渗 液包括5％葡萄糖、磷酸缓冲盐水、tris-缓冲盐水、HEPES-缓冲盐水， 或者上述任何一种缓冲液。还可以将水溶液中的生物材料匀浆、研磨处 理，也就是说被粉碎瓦解，使提取溶剂与生物材料之间有最大的接触。 但是如果生物材料是生物液体，很可能就不必加入液体，除非为了适合 提取溶剂的可混溶性而稀释此生物液体的离子强度。 朊病毒蛋白

在此所使用的名词“朊病毒蛋白”指的是在神经组织特别是脑组织 和在较低级的淋巴样组织以及所有其它组织中表达的一种天然蛋白质。 在某些情况下，朊病毒蛋白采取一种在此被称为异常朊病毒蛋白的致病 性构象。一些个体中朊病毒基因的某些突变似乎使朊病毒蛋白易采取这 种致病性构象。但生物体暴露于可传播的感染性病原朊病毒，也可以诱 发导致病理状态的构象改变。

与正常朊病毒蛋白相比较，异常朊病毒蛋白对蛋白水解作用迟钝很 多。用蛋白酶，特别是蛋白酶-K处理生物材料可消化正常朊病毒蛋白， 但不消化异常朊病毒蛋白。

在下面的特定实施例中，借助于本发明的方法提取了山羊异常朊病 毒蛋白(PrPsc)，但是应用本发明的方法也可以提取来自特别是上述其 它动物种类的其它朊病毒蛋白。

异常朊病毒蛋白的种类包括在神经退化性疾病Kuru、Creutzfeld- Jakob病(CJD)、Gerstmann-Straussler综合症(GSS)和致死的家 族性失眠症中发现的人类朊病毒蛋白。CJD和GSS的某些情况与朊病毒 基因的已知突变有关。CJD还与暴露于TSE有关。例如如上面指出的， 已证明人CJD与牛海绵状脑炎有关系。本发明是首次使有可能在尸体剖 检之前对人提取异常朊病毒蛋白。检测被提取的异常朊病毒蛋白可用于 诊断这些疾病中的任何一种疾病。

瘙痒病(绵羊、山羊)和牛海绵状脑疾(cows)是动物的异常朊病 毒病。在鸡、貂、猪、小鼠、仓鼠和豚鼠体内也已分离出朊病毒蛋白。 而且通过暴露于从人或其它动物来源的朊病毒，小鼠、仓鼠和豚鼠可引 发海绵状脑炎。借助于本发明的方法可以检测或提取来自这些来源中任 何一种的朊病毒蛋白。 提取溶剂和条件

用于本发明的提取溶剂在感胶离子状态下必须能够分离成与水或水 溶液不同的相。同时，朊病毒蛋白在此提取溶剂中必须是可溶解的。某 些极性有机溶剂符合这些标准。优选的极性有机溶剂是六氟-2-丙醇。 可使用的其它溶剂包括异丙醇、1，1，1-三氟-2-丙醇(TFIP)、2，2，3， 3-四氟-1-丙醇(tetF1P)、全氟-叔-丁醇(PFtBA)、1，1，1，3，3，3 -六氟丙醇(HFA)、三氟乙酸(TFA)、2，2，2-三氟-1-乙醇(TFE)、 2，2，3，3，4，4，4-七氟-2-丙醇(HFB)、1，1，1，3，3，4，4，4-八氟-2 -丁醇(OFIB)、1-甲基-2-吡咯烷酮(NMP)，见Wille等，分子 生物学杂志，259：608，1996。其它可能有用的溶剂包括DMSO和四氢 呋喃等。另外还可使用与水不混溶，但朊病毒蛋白可溶于其中的溶剂。

在特定的实施方案中，该溶剂在例如生理离子强度(等渗水溶液) 或低于生理离子强度时(抵渗水溶液)与水是混溶的。但是，当其缓冲 液含有以高于阈值浓度(或离子强度)存在的感胶离子盐时，该提取溶 剂不能溶于水溶液：此二相分离成为提取溶剂层和水溶液层。这种情况 在此被称为“感胶离子状态”。达到感胶离子状态的水溶液感胶离子盐 离子强度值是可变的，取决于所选择的提取溶剂和所使用的盐。通过滴 定或感胶离子盐浓度的其它系统改变，并测定提取溶剂与此水溶液的可 混溶性或不可混溶性，可容易地确定此离子强度值。如在此使用的，具 有在此离子强度下提取溶剂与水分离的感胶离子盐离子强度的水溶液被 称为感胶离子水溶液。含有较低浓度感胶离子盐或生理盐的水溶液如等 渗缓冲液，可被认为是非感胶离子溶液。

通常是将大约等体积的提取溶剂和生物材料水制备物用于溶剂提取 过程。但是，提取溶剂对水制备物的比例可以在大约5∶1-1∶5的范围 之内，优选地在大约3∶1-1∶3。

在提取溶剂与水制备物混合之后，可在特定的温度下将此混合物温 育一段时间，以便促进将朊病毒蛋白提取进入提取缓冲液中。温育时间 可在1分钟至几小时内变化，可通过分析被提取的材料中朊病毒蛋白的 存在量来确定。如在实施例中所述，应用层析法或免疫测定法或者应用 这二种方法，测定提取材料中朊病毒蛋白的含量对时间达到高峰值之后， 更多的温育时间不会影响朊病毒蛋白的提取率。

此外，还可以调整温育的温度以便增加提取的效率，只要在所选择 的温育下提取溶剂和水溶液二者都是液体。较热的温度即高于室温的温 度是优选的，因为它们可增加朊病毒蛋白在提取溶剂中的溶解度。特别 有用的是在大约50℃-60℃范围之内的温度。正如其它的变量例如水制 备物的离子强度和温育时间一样，最佳温度也可以通过常规的实验和测 定来确定。

                         相分离

多种感胶离子盐可用于增加该水溶液的离子强度，从而诱导相分离。 优选的盐是具有感胶离子的硫酸钠和硫酸铵。这二者所使用的浓度都远 远低于沉淀蛋白质的浓度。例如在特定的实施方案中，是将0.5M硫酸 钠溶液加入等体积的提取溶剂/水制备物混合液中，形成硫酸钠的最后浓 度为0.25M。此浓度足以导致HFIP与水发生相分离。也可以使用其它 的盐，只要它们在可溶解的浓度能达到必需的感胶离子活性。在此使用 的名词“感胶离子活性”意指感胶离子盐溶液的结构形成特性。通过达 到足够的感胶离子盐浓度来形成感胶离子活性，以便导致有机相与水相 的相分离。避免使用感胶离子盐的蛋白质沉淀浓度。

“感胶离子”盐或“结构形成性”盐也被称为kosmotropes，这种 盐可促进水溶液有序化从而排除有机溶剂。如果此有机溶剂是提取溶剂 则发生相分离。如果它是蛋白质则此蛋白质从溶液中被盐析出。良好的 结构-形成性盐包括硫酸、磷酸和柠檬酸等的钠盐或铵盐(Washabaugh 和Collins，生物化学杂志，261：12477，1986)。(结构-破坏性盐， 或chaotropes，包括盐酸胍盐、高氯酸钠、溴化钠等。这些盐具有相反 的作用，它们驱使有机溶剂进入水溶液)。水溶液的离子强度是溶液中 离子总数的函数，无论它们是结构-形成性或结构-破坏性离子。名词 “离子强度”意指盐的浓度。

如上面所论述的，可以作为固体或浓缩液的形式加入感胶离子盐， 只要最后的感胶离子盐浓度可有效地导致相分离。优选的是，在增加该 混合液的感胶离子活性之后提取溶剂对水相(水相包括生物材料的水制 备物和任何一种盐溶液)的最后比例是大约1∶10-10∶1，优选地(以 及如下面所例证说明的)是大约1∶3-3∶1，只要在此提取溶剂对水相 的较低比例下，最后的盐浓度仍然足够高而可以导致相分离。

在增加感胶离子活性之后，提取溶剂与水制备物分离，现在此提取 溶剂含有存在于生物材料中的任何朊病毒蛋白。分离过程花费几分钟， 当二相澄清并在它们之间看到不连续的分离，表示分离过程完成。一旦 二相已完全分离，例如可以通过用吸管或注射器抽取，或者用分液瓶取 出或回收现在已含有任何朊病毒蛋白的提取溶剂。

通过例如蒸发、冷冻干燥或其它浓缩可使含有任何朊病毒蛋白的提 取溶剂(在此称为“提取物”)干燥，从而形成高度浓缩的或干燥的提 取物。该提取物可能含有其它一些成分，包括细胞脂质，脂质膜结合的 蛋白质以及其它一些更疏水性的细胞成分。如果需要，借助于例如在下 面例证说明的亲水性相互作用层析，或者其它一些层析技术(阳离子交 换层析、凝胶渗透层析、反相层析以及例如在抗体柱上的亲和层析)可 除去这些成分，分离或纯化朊病毒蛋白。

另一方面，如下面所述对浓缩或干燥的提取材料可直接进行分析， 检测异常朊病毒蛋白。 朊病毒蛋白检测器；免疫测定法

本领域已知多种朊病毒蛋白的检测方法，包括用于选择性地检测异 常朊病毒蛋白的测定法，都是分析朊病毒蛋白的有效工具。已证明毛细管 凝胶电泳是异常朊病毒蛋白的有效分析工具(Schmerr和Jenny，电泳， 19：409，1998)。优选的方法是例如在同上文献中Schmerr和Jenny 所述的免疫测定法。在此文献中所述的抗血清是对异常朊病毒蛋白特异 性的，因为发现它在蛋白质印迹试验中与瘙痒病-感染的脑组织反应， 但与正常的脑组织不反应。与朊病毒蛋白起反应的其它抗血清是本领域 熟知的。优选的免疫测定法是微量滴定板ELISA(例如Grathwohl等， 病毒学方法杂志，64：205，1997)。

因此在某些情况下，检测是否存在朊病毒蛋白，而特别是异常朊病 毒蛋白，是基于朊病毒蛋白的生物物理和生物化学特征。这些特征包括 蛋白酶抗性(特别是对蛋白酶-K)和消化方式(是否可用蛋白水解酶、 糖酵解酶、化学药品、加热、变性剂等消化)。这类处理对表现分子量 和等电点的作用以及各种结合测定法都可以被评价。借助于层析法，凝 胶电泳和其它分子量敏感的技术可以检测其蛋白酶抗性和消化方式。应 用毛细管等电聚集(IEF)或凝胶等电聚集法都可以测定等电点，尽管 毛细管IEF比大多数凝胶IEF能够更有效地测定朊病毒pI，而且，通过 离子交换层析可以对全部电荷(酸性或碱性)作定性测定。本领域已知 的其它一些生物物理技术也可被用于鉴定朊病毒蛋白。

用于检测朊病毒蛋白的测定法实例包括在加热、溴化氰裂解和神经 氨酸等酶等处理后(Bolton等，病毒学杂志，53：596，1985)以及在糖 苷酶处理和外源凝集素结合后(Somerville和Ritchie，普通病毒学杂志， 71：883，1992)测定该蛋白质的近似分子量和等电点，还包括测定其蛋 白酶-K抗性(Race等，美国兽医研究杂志，53：883，1992)以及免 疫测定法(Farquhar等，病毒学方法杂志，24：215，1989)。

另外，对被提取的，优选地是被纯化的朊病毒蛋白进行测序或微测 序使有可能对它作出明确肯定的鉴定。

借助于本领域如下已知的技术测定其在适当生理样品中的浓度可完 成对朊病毒蛋白的免疫测定：例如放射免疫测定法，ELISA(酶联免疫 吸附试验)，“夹心”免疫测定法，免疫放射测量试验，凝胶扩散沉淀 反应，免疫扩散试验，原位免疫测定法(例如用胶体金、酶或放射性同 位素标记)，蛋白质印迹分析法，沉淀反应，凝集试验(例如凝胶凝集 试验，红细胞凝集试验)，补体固定试验，免疫荧光测定法，蛋白A和 蛋白G测定法，免疫电泳试验等。在一个实施方案中，是通过检测第一 抗体上的标记物来检测抗体的结合。在另一实施方案中，是通过检测第 二抗体或试剂对第一抗体的结合来检测第一抗体。

本发明的提取方法提供了一种可用于产生补充抗体的廉价朊病毒蛋 白来源。而且，因为本发明的提取条件完全不同于常规的提取条件，所 以按照本发明提取的朊病毒蛋白可能具有不同的构象，并且如果用于免 疫接种将诱发不同的抗体群。

本方法将提取时间缩短至1-2小时。而且因为方法简单而可以自动 化。本方法提取所有分子大小的朊病毒蛋白，所以它不受限制。它还使 异常朊病毒蛋白溶解，这样大多数免疫测定法可用于检测这种蛋白。而 且重要的是，本方法降低了异常朊病毒蛋白的传染性，使操作过程比较 安全。 试剂盒

可以以试剂盒的形式方便地提供用于实施本发明的组成成分。在其 最简单的实施方案中，本发明的试剂盒提供了提取溶剂，优选地是HFIP， 以及感胶离子盐(或浓缩的感胶离子盐溶液)，用于增加提取溶剂-水 制备物混合液的感胶离子活性。可预先计算每种成分的量，以便提供特 定的测定次数。在进一步的实施方案中，该试剂盒包括样品容器，优选 地是由塑料或经处理的材料制成的容器，以避免朊病毒蛋白的非特异性 结合。

如在此使用的，名词容器具有其最广泛的含义，用于容纳材料或试 剂的容器。它可由通常用于容纳试剂的玻璃、塑料、陶瓷、金属或其它 任何材料制成。但是，允许使用的材料应该不与打算容纳的内含物起反 应。

该试剂盒还可包含用于消化生物样品中正常朊病毒蛋白的蛋白酶- K。

在进一步的实施方案中，该试剂盒还包含用于生物样品水制备物的 带有容积刻度的样品容器。在此实施方案中，极性有机溶剂和感胶离子 盐按预先测定的单位量连同样品容器一起以最佳的方式被提供使用。可 将生物样品制备物置于样品容器内。加入预先测定的单位量提取溶剂， 随之混匀。然后可加入预先测定的单位量感胶离子盐，诱使提取溶剂和 水发生相分离。在更进一步的实施方案中，试剂盒内提供了用于处理生 物样品水制备物的蛋白酶-K，优选地是按预先测定的单位量被提供。

用于从组织样品中提取朊病毒蛋白的试剂盒可包括稀释缓冲液，如 0.32M蔗糖溶液或磷酸缓冲盐水，用于匀浆化组织，制成生物材料水制 备物。

在另一实施方案中，其中该试剂盒是用于检测生物材料或样品中是 否存在异常朊病毒蛋白的试剂盒，此试剂盒提供了如上面所述的异常朊 病毒蛋白检测器或测定法。用于检测按照本发明提取的异常朊病毒蛋白， 如上面所述的免疫测定法是优选的。

在另一个更进一步的实施方案中，该试剂盒包含一种免疫层析膜或 支持物。可将含有任何朊病毒蛋白的提取溶剂直接施加于支持物上，或 者可在例如增溶作用之后施加干燥的提取物。在适当的条件下，朊病毒 蛋白可流过支持物。可以通过例如固定化的抗-朊病毒抗体捕获它，并 可检测固定化的朊病毒蛋白。本领域已知的许多用于免疫层析测定法的 方法和装置都可应用于本发明。免疫层析测定法在不便获得实验室设备 的野外条件下特别有用。在如下美国专利中提供了这种测定法的实例： No.5,248,619；No.5,451,504；No.5,500,375；No.5,624,809；和No. 5,658,801。

本发明的试剂盒优选地还包括包装材料和附于包装盒上或插入包装 中的使用说明书。

参考下面被提供作为本发明例证的非限制性实施例可以更好地理解 本发明。

                       实施例1 分析从感染的绵羊脑和淋巴节中提取的异常朊病毒蛋白

在10％十二烷基肌氨酸钠中将来自二只瘙痒病感染绵羊的脑或淋巴 节组织制备匀浆，并用蛋白酶-K处理以便消化正常宿主的朊病毒蛋白。 将等体积(0.5mM)的匀浆和HFIP混合在一起，在56℃温育5分钟。 对此混合液加入0.5mM 0.5M Na2SO4，并将此混合液再温育5分钟。 在这些条件下HFIP层与水层分层。吸出HFIP层并作离心干燥。将此 干燥的样品再混悬于25μl蒸馏水中并使之混匀。将10μl样品与5μl 20％ SDS缓冲液混合均匀，在100℃煮沸5分钟。

在10％至15％梯度聚丙烯酰胺凝胶上进行蛋白质印迹分析。在标准 条件下从聚丙烯酰胺凝胶将此蛋白质转移至硝酸纤维素膜上。然后通过 与5％鱼明胶液共温育对此硝酸纤维素膜作封闭处理，再用Tris-Tween 缓冲液洗膜。使此硝酸纤维素膜与兔抗-朊病毒蛋白(针对全朊病毒蛋 白产生的抗体，作1-2500倍稀释；Kascak等，免疫学研究，26：259， 1997；也可见Miller等，兽医诊断研究，5：309；Kascak等，病毒学杂 志，59：676，1986)共温育过夜。在与抗-朊病毒抗体共温育之后，用 Tris-Tween洗此硝酸纤维素膜，然后与抗-兔IgG-HRP(辣根过氧 化物酶)偶联物反应，温育1小时。然后再充分洗此硝酸纤维素膜，并 用化学发光试剂(Pierce UltraSuperSignal)显影。应用化学发光显像 仪(Chemi-Imager-4000；Alpha，Innotech)检测过氧化物酶活性。

含有2.75μl材料、来自二只瘙痒病感染绵羊的提取物产生了指示脑 组织和淋巴结组织中都存在异常朊病毒蛋白的印迹带。来自一只瘙痒病 感染绵羊的含有1.5μl材料的脑组织提取物也产生了指示异常朊病毒蛋 白的印迹带。来自正常(未感染的)绵羊的相似提取物的蛋白质印迹分 析未产生指示异常朊病毒蛋白的任何印迹带。

                       实施例2 分析从感染的绵羊脑和淋巴结组织中提取和纯化的异常朊病毒蛋白

此实施例显示应用亲水性相互作用层析法(HILIC)进一步纯化和 分析异常(瘙痒病)朊病毒蛋白(PrPsc)。如前所述用去污剂和蛋白酶 K处理包含绵羊脑和淋巴结的组织样品。将形成的提取物施加于HILIC 柱，用在0.1％三氟乙酸和50mM六氟-2-丙醇中配制的逐渐降低的乙 腈梯度液洗脱。如用放射性碘化的朊病毒蛋白测定的，从层析柱得到的 回收率是大约75％。干燥之后将所收集的峰值组分再混悬于水中，用对 朊病毒蛋白特异性的抗体进行检测。此方法使其有可能有效地纯化朊病 毒蛋白以及借助于免疫测定法进行检测，因为已除去了干扰性去污剂。

                       实施例3 对从感染的绵羊脑中提取的异常朊病毒蛋白的分析 制备绵羊脑组织材料

从野外的病羊获得瘙痒病感染的绵羊脑组织，蛋白质印迹分析已证 明这些病羊为异常朊病毒蛋白阳性(Race等，美国兽医研究杂志，53： 883，1992)。制成三个阳性脑的混合物。此相同的混合物被用于在此所 提供的所有实验。正常脑组织来自无瘙痒病畜群的绵羊，蛋白质印迹分 析为异常朊病毒蛋白阴性。用修改的Bolton等(病毒学杂志，53：596， 1985)的方法制备脑组织材料用于层析试验。简单地说，切除脑干，称 重，并置于0.32M蔗糖(10％v/v)浴中。然后应用0.7cm不锈钢匀浆 器，以最高转速将此脑组织材料与Brinkman Polytron(Kinematica AG， Lucerne Switzerland)一起匀浆60秒钟。以10000g将此匀浆离心20 分针除去颗粒，并将形成的上清液以230000g离心1小时。然后使此沉 淀物经受多次洗涤并如上超速离心。用含有10％十二烷基硫酸钠和蛋白 酶K(50μg/ml)的10mM Tris pH7.4处理样品。完成超离心后， 样品重悬于10mM Tris pH7.4中(200μl/g的初始脑样品)。 亲水性相互作用层析(HILIC)

以100℃加热10分钟使该样品溶解于含有2mM EDTA，5％SDS 和10％六氟-2-丙醇的pH8.00 0.01M Tris HCl液中。用SDS处 理之后，将此样品置于含有0.1％TFA酸和50mM六氟-2-丙醇的由 100％乙腈组成的溶剂中(缓冲液A)，并施加于亲水性相互作用柱。所 用的层析液全部来自PolyLC公司(Columbia，MD，USA)，尺寸规格 为200×4.6mm，5μm，300礌。对三种装填物进行了评价，聚蜡LPTM (阴离子交换材料)，聚羟乙基ATM(中性材料)和聚磺乙基ATM(强 阳离子交换材料)(三个商标的所有权都属于PolyLC公司)。流速为0.5 ml/分钟。用于洗脱PrPsc的条件是100％A洗脱8分钟，然后是用含有 0.1％三氟乙酸和50mM六氟-2-丙醇的直至100％水的线性梯度液(缓 冲液B)洗脱15分钟。最后用100％B洗脱10分钟。收集峰值组分，在 真空离心机(Savant仪器公司，NY，USA)内干燥。将这些组分再混悬 于10μl无离子水中，将免疫印迹试验PrPsc阳性的组分用于毛细管电泳 测定。 以125I标记朊病毒蛋白

使用IODOGENTM(Pierce，Rockford，IL，USA)以125I标记PrPsc。 使标记材料通过一个固相提取柱，可将标记的蛋白质从游离的125I中分 离出来，此提取柱包含已用缓冲液A平衡过的聚蜡LPTM(PolyLC公司)。 用缓冲液B从提取柱中洗脱出标记的PrPsc。未结合的125I遗留在提取柱 中，可作为固体放射性废物被遗弃。在真空离心机中干燥含有标记PrPsc 的组分，溶解于水中，用缓冲液A作1∶10稀释，然后对HPLC柱加样。 斑点印迹试验

将来自HILIC层析的峰值组分1μl等分量滴加于硝酸纤维素纸片 上，干燥后在含有500mM NaCl、0.05％吐温20(TTBS)和5％明胶 的pH7.5 20mM Tris液中温育1小时。用TTBS洗印迹斑点2次， 然后与针对朊病毒蛋白肽产生的，1∶500稀释的抗体(针对肽142-154 的兔抗体)在25℃共温育3小时。温育之后用TTBS洗印迹斑点2次， 然后与生物素化的蛋白G(Bio-Rad实验室，Hercules，CA，USA) 共温育1小时。同上再洗此印迹斑点。将偶联于亲和素(NeutrAvidinTM， Pierce，Rockford，IL，USA)的辣根过氧化物酶滴加于此印迹斑点上，25 ℃温育1小时。温育后用TTBS洗印迹斑点6次。然后在SuperSignal 底物(Pierce)系统中温育印迹斑点10分钟，最后对Kodak X-OMAT AR(Eastman Kodak公司，Rochester，NY，USA)X-射线胶片暴光15 秒钟。 125IPrPsc的结合测定法

测定了来自聚蜡LP提取柱的含有125I的组分对抗体的结合活性， 此抗体是针对相当于朊病毒蛋白氨基酸残基142-154的肽产生的。在 Savant真空离心机中以42℃干燥装有放射活性材料的试管，并再混悬于 10μl水中，然后用含有0.1％BSA的缓冲盐水稀释。以溶于pH9.0 0.1M Na2CO3液中的该抗体包被PVC微量培养板。用上面的缓冲液洗此培养 板之后，加100μl 125I-PrPsc于此培养板上，在37℃温育2小时，然 后在4℃温育过夜。洗此培养板，并切割成单个的孔池，作放射性计数。 从孔池中的cpm扣除本底cpm。 毛细管电泳的条件

在Beckman P/ACE 5500型电泳仪(Beckman仪器公司，Fullerton， CA，USA)上实施游离区带毛细管电泳(Schmerr和Jenny，电泳，19： 409，1998)。应用空气冷却的氩气激光器进行激光诱发发光(LIF)检 测，在488nm激发，520nm发射。从Beckman仪器公司获得未修改的 毛细管。20cm(至检测器的长度)×201μm I.D的毛细管与pH8.0 200 mM Tricine液一起使用。这种缓冲液含有0.1％辛糖苷(Boehringer Mannheim GmbH，Indianapolis，IN，USA)。在分离制备中用0.25M NaOH漂洗此毛细管1分钟，用水漂洗2分钟，然后用缓冲液漂洗2分 钟。分离条件是在20℃ 30KV 3分钟。电流为约20μA。注入样品15 秒钟，随之注入漂洗缓冲液5秒钟。样品体积大约为0.95nl。在高压下 进行漂洗，在低压下进行样品注入。 免疫复合物和朊病毒结合测定

将含有大约2pm荧光标记肽的15μl荧光素标记肽与亲和纯化的兔 IgG混合，以便证明抗体对荧光素标记肽的结合。对此待测定物加入1μl 来自HILIC层析的峰值组分。混匀这些成分之后，在25℃温育此样品10 分钟。 结果

纯化和碘化之后PrPsc的层析图谱被显示在图1中。来自125I-标记 朊病毒蛋白的放射活性(cpm)与在280nm的吸光度相吻合，仅吸光度 测定的最后一个吸收峰不一致。根据装载在层析柱上的125I cpm回收率， 异常蛋白的产率是大约76％。cpm峰值和A 280吸光度与在结合测定中 显示抗体活性的峰值相一致(图2)。结合测定在大约25分钟的主峰值 与图1中在25分钟的125I-PrP峰值和A 280吸光度峰值相一致。对于 来自提取(未纯化的)瘙痒病感染的绵羊脑组织的层析图谱(未被显示) 得到了类似的结果。对于异常朊病毒蛋白，文献中已报导了一个宽范围 的pI值(Schmerr和Jenny，同上；Safar等，美国国家科学院学报，87： 6373，1990；Somerville等，普通病毒学杂志，70：25，1989)。这种 蛋白质的pI值会影响这种蛋白质对柱填充物的结合。在带正电荷的聚蜡 LP柱和中性聚羟乙基A柱上其保留时间没有明显的差异。这表示此蛋 白质可能是酸性蛋白质。含有SDS的异常朊病毒蛋白样品以很宽的范围 从带负电荷的聚磺乙基A柱上洗脱出。因此，在聚蜡LP柱上纯化的异 常朊病毒蛋白在聚磺乙基A柱上被再次层析。它在外水体积中或接近外 水体积中被洗脱表明它确是酸性的。通过凝胶等电聚焦和毛细管等电聚 焦都证实了这点(Schmerr等，层析，A.802：135，1998)。pI值的范 围为3-6，大部分在3.00。这些结果表明，在亲水性相互作用层析中必 须使用中性的或阴离子交换材料。

在应用HILIC纯化样品毛细管免疫电泳中，形成的电泳图谱(未显 示)表明，来自感染绵羊的样品确实起反应，而来自正常(来感染)绵 羊的样品不起反应。因为SDS抑制包括毛细管电泳测定法在内的典型免 疫测定法，所以，为了实行这种测定法必须除去SDS。可以在HILIC层 析之后对样品实施应用毛细管电泳的竞争性测定法，因为SDS被洗脱进 入外水体积中或接近外水体积中(Jeno等，分析生物化学，215：292， 1993)。

                        实施例4 分析从感染的绵羊血液中提取的异常朊病毒蛋白

用Tris缓冲盐水稀释来自TSE-感柒绵羊血液样品的表面淡黄色离 心组分(10％组织：90％缓冲液)。然后用蛋白酶处理此样品，以便消 化正常宿主朊病毒蛋白，但不消化被改变的朊病毒蛋白的异常形式。消 化处理之后，使被处理的样品与等体积六氟-2-丙醇(HFIP)混合， 并在56℃温育5分钟。加入等体积0.5M硫酸钠，允许其进行相分离。 取出含有HFIP的液层，真空离心干燥样品。

将此沉淀物再混悬于水中，并将此悬液置于含有95％乙腈，5％水， 0.1％三氟乙酸和50mM HFIP的层析有机流动相中。将此流动相施加 于聚羟乙基天冬酰胺TM(PolyLC公司)固相提取柱。用100％水、0.1％ 三氟乙酸和50mM HFIP从此支持载体中洗脱出异常朊病毒蛋白，然 后干燥，并再混悬于水中。

通过毛细管免疫电泳发现存在异常朊病毒蛋白。在未感染TSE的对 照血液样品的电泳图谱中未检测出异常朊病毒蛋白。

                        实施例5 分析从感染的黑尾鹿血液中提取的异常朊病毒蛋白

以来自TSE-感染的黑尾鹿血液样品重复实施例4的步骤。通过毛 细管免疫电泳发现存在异常朊病毒蛋白。在未感柒TSE的对照血液样品 的电泳图谱中未检测出异常朊病毒蛋白。

                        实施例6 分析从感染的麇鹿血液中提取的异常朊病毒蛋白

以来自TSE-感染的麋鹿血液样品重复实施例4的步骤。通过毛细 管免疫电泳发现存在异常朊病毒蛋白。在未感染TSE的对照血液样品的 电泳图谱中未检测出异常朊病毒蛋白。

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在此引用的所有专利、专利申请、试验方案和出版物均以其完整形 式被引入作为参考。

本发明不受在此所述的特定实施方案范围的限制。其实，根据前面 的论述和附图，除了在此所述之外本发明的多种修改形式对于本领域的 技术人员将是显而易见的。旨在将这些修改形式归属于所附权利要求的 范围之内。

                       发明背景