技术领域
[0001] 本
发明属药物浓度监测技术领域,涉及检测人血清中药物浓度的方法,具体涉及基于液相色谱-
串联质谱法(LC-MS/MS)同时测定人血清中万古霉素和晶状降解产物CDP-1(包括2种降谢产物CDP-1-m和CDP-1-M)浓度的方法。
背景技术
[0002] 据资料记载,糖肽类抗生素万古霉素在临床
治疗实践中已历经60年历史,主要用于干预革兰阳性菌引起的感染,目前仍是治疗耐甲
氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)的首选药物。医疗实践显示,万古霉素药代动
力学个体差异大,安全范围小,治疗窗窄,常发生肾毒性和
耳毒性等不良反应,故推荐进行治疗药物浓度监测(TDM)。
现有技术公开了万古霉素是时间依赖性的抗生素,药代动力学/药效学(PK/PD)显示其疗效与24小时下的药时曲线下面积/最小抑菌浓度(AUC24/MIC)有关,由于AUC较难直接定量,常采用谷浓度为其替代指标。2016年中国药理学会制订了《中国万古霉素治疗药物浓度监测指南》,推荐成人患者万古霉素血药浓度应维持在10-15mg/L,成人严重MRSA感染者血药谷浓度应维持在10~20mg/L,但是血药谷浓度≥15mg/L乃是肾毒性发生率增加的危险因素。
[0003] 有临床研究显示,血液
透析患者由于
导管污染等原因容易引起感染,革兰阳性菌是主要的病原菌,美国感染病协会(IDSA)指南推荐万古霉素用于MRSA、
氨苄西林耐药肠球菌等导管相关感染,但万古霉素的用法用量仍来自国外。为了达到目标靶浓度,IDSA指南推荐对于肾功能不全的患者(包括透析患者)进行万古霉素浓度监测,因而根据血药浓度监测结果调整
给药方案,指导临床个体化用药,可提高万古霉素的临床有效性和安全性,但由于万古霉素有效浓度范围较窄,若TDM浓度检测不准确,则影响患者的个体化剂量调整,从而无法达到精准治疗的目的。
[0004] 目前,临床上用于万古霉素TDM的检测方法包括,
微生物法、免疫法、高效液相法(HPLC)和LC-MS/MS法等;其中,免疫法操作简便、自动化程度高,是目前万古霉素TDM常用的方法,但有文献报道免疫法相较于HPLC法和LC-MS/MS法,测定结果可能偏高,甚至偏高40%左右,究其原因可能是由于降解产物CDP-1的交互作用。万古霉素主要经肾脏排泄,CDP-1是其在肾脏的晶状降解产物,由一对异构体CDP-1-m和CDP-1-M组成,在透析等肾功能异常的患者中尤为多见。由于TDM血样来源广泛,本
申请的前期免疫法和HPLC的TDM检测中,发现HPLC法容易受杂峰等影响色谱峰的积分,导致测定结果偏差大;以及在前期的实验中,发现目前市售的CDP-1的标准品含有一定量的万古霉素,由于CDP-1-m、万古霉素和CDP-1-M均为亲
水性化合物且极性接近,难以分离到纯的标准品,尚需定量CDP-1标准品中三个化合物各自的含量。
[0005] 目前,有文献报道采用高效液相色谱法(HPLC)测定万古霉素和降解产物CDP-1的浓度,但是该方法存在血清用量大,200μL,检测时间长,35min,特异性差等缺点,且该方法仅是测定CDP-1-m和CDP-1-M的总浓度,无法分别定量其中的2个降解产物,难以满足目前TDM的要求。
[0006] 鉴于现有方法存在的问题,本申请的
发明人拟提供一种同时测定人血清中万古霉素和2个降解产物CDP-1-m和CDP-1-M的液质联用法。建立该方法后进行了一系列方法验证,满足2015版药典的相关要求,并用于临床TDM血样的检测,特别是
血液透析患者。
[0007] 与本发明线相关的参考文献有:
[0008] [1]Hanrahan T,Whitehouse T,Lipman J,et al.Vancomycin-associated nephrotoxicity:A meta-analysis of administration by continuous versus intermittent infusion.Int J Antimicrob Agents.2015,46(3):249-253.[0009] [2]Forouzesh A,Moise PA,Sakoulas G.Vancomycin ototoxicity:a reevaluation in an era of increasing doses.Antimicrob Agents Chemother.2009,53(2):483-486.
[0010] [3] R,López Cortés LE,Molina J,et al.Optimizing the clinical use of vancomycin.Antimicrob Agents Chemother,2016,60(5):2601-2609.[0011] [4]Ye ZK,Chen YL,Chen K,et al.Therapeutic drug monitoring of vancomycin:a guideline of the Division of Therapeutic Drug Monitoring,Chinese Pharmacological Society.J Antimicrob Chemother,2016,71(11):3020-3025.[0012] [5]Liu C,Bayer A,Cosgrove S E,et al.Clinical practice guidelines by the infectious diseases society of america for the treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in adults and children:executive summary.[J].Clin Infect Dis,2011,52:e18-e55.
[0013] [6]Iwamoto T,Kagawa Y,Kojima M.Factors influencing the overestimation of plasma vancomycin concentrations measured by the Abbott TDx technique.Ther Drug Monit,2005,27(1):58-62.
[0014] [7]Kingery JR,Sowinski KM,Kraus A,et al.Vancomycin assay performance in patients with end-stage renal disease receiving hemodialysis.Pharmacotherapy,2000,20(6):653-656.
[0015] [8]Backes DW,Aboleneen HI,Simpson JA.Quantitation of vancomycin and its crystalline degradation product(CDP-1)in human serum by high performance liquid chromatography.J Pharmaceut Biomed,1998,16(8):1281-1287.[0016] [9]国家药典委员会.中华人民共和国药典2015年版四部..北京:中国医药科技出版社.9012
发明内容
[0017] 本发明的目的是克服现有技术的
缺陷和不足,提供基于液相色谱-串联质谱法(LC-MS/MS)同时测定人血清中万古霉素和晶状降解产物CDP-1浓度的方法;本方法快速、简便、可同时测定人血清样本中万古霉素和2个主要降解产物CDP-1-m和CDP-1-M的浓度,本方法无需昂贵的
试剂,操作简单、血清用量少、快速、成本低、准确度高,可用于常规血药浓度监测。
[0018] 本方法通过以下技术方案实现:采用高效液相色谱-紫外法测定标准品中CDP-1-m、万古霉素和CDP-1-M的含量,配制相应比例的万古霉素和降解产物标准曲线及质控样品,待测样品经预处理后,经酸性流动相在色谱柱上分离,用串联质谱检测,包括以下步骤:
[0019] 1)CDP-1标准品中CDP-1-m、CDP-1-M和万古霉素的含量测定
[0020] 称取一定量的标准品于容量瓶中,用纯水溶解并定容,配制成一定浓度的贮备液。吸取适量贮备液,用5%的乙腈水溶液稀释进样;
[0021] 采用通用型的C18液相色谱柱,高效液相系统采用通用型高压
泵、进样器和紫外检测器,采用乙腈和
磷酸二氢
钾缓冲液作为流动相,等度洗脱;
[0022] 本发明的一个
实施例中,流动相优选为乙腈∶磷酸二氢钾缓冲液(5mM,含0.023%磷酸)为9∶91,v/v;
[0023] 2)血清样品预处理
[0024] 取待测样品于离心管中,加入内标工作液、一定浓度的
甲酸水溶液,混匀,加入定量的有机试剂沉淀蛋白,13000rpm离心后,吸取定量上清液,加入5%的乙腈水溶液,混匀待测;
[0025] 3)样品分离
[0026] 采用Waters通用型超高效液相色谱柱,填料为亚乙基桥杂化颗粒C18柱,液相色谱系统为超高压高
分辨率计量泵、控温柱温箱和自动进样器,采用乙腈和0.1%甲
酸溶液作为流动相,梯度洗脱;
[0027] 本发明的一个实施例中,优选乙腈∶0.1%甲酸溶液起始比例为5∶95,v/v;
[0028] 4)样品检测
[0029] 采用通用型串联质谱检测器检测样品中万古霉素、CDP-1和内标的峰面积;
[0030] 质谱电离源:电喷雾电离源;扫描方式:多反应监测(MRM)正离子模式;离子通道:m/z 726.2→m/z 144.2(万古霉素,CDP-1)和m/z 718.2→m/z 144.2(内标);
[0031] 本发明的一个实施例中,仪器参数优选为气帘气30Arb;碰撞活化解离(CAD)8;电喷雾
电压5500V;离子源
温度500℃;离子源气体1和2均为50psi;万古霉素、内标的碰撞
能量均为18V,CDP-1碰撞能量为23V;去簇电压为100V;射入电压为10V;扫描时间为80ms;
[0032] 5)浓度计算
[0033] 以样品浓度为X轴,待测物峰面积(As)与内标峰面积(Ai)比值为Y轴,进行加权回归分析,标准曲线回归方程以及样品的浓度使用含量分析
软件进行计算。
[0034] 本方法中,待测样品为人血清。
[0035] 本发明的测定人血清中万古霉素和CDP-1浓度的方法中,对待测样品进行简单的预处理后,在酸性流动相下,经色谱柱分离,串联质谱检测,万古霉素和CDP-1的线性均良好,CDP-1-m线性范围为0.1437~14.37μg/mL,万古霉素线性范围为1.057~105.7μg/mL,CDP-1-M线性范围为0.2540~25.40μg/mL;方法回收率良好,基质不影响待测物和内标的检测,批内批间准确度精
密度均符合接受标准。本发明方法快速准确、操作简便、血清用量少、成本低,适合临床常规血药浓度监测。
[0036] 本方法具有以下优点:
[0037] 1)同时测定:仅需一种方法可同时测定CDP-1-m、万古霉素和CDP-1-M浓度,提高了临床血药浓度检测的效率。
[0038] 2)血清用量少:测定一份样品仅需50μL血清样品。
[0039] 3)预处理简单:采用乙腈沉淀蛋白法,上清液稀释后进样,操作简便,成本较低,适于常规检测。
[0040] 4)特异性好:采用色谱分离和质谱检测器,内源性物质等对测定无干扰。
[0041] 5)分析时间短:一份样品整个分析时间仅为5min。
附图说明
[0042] 图1:LC-UV法检测CDP-1标准品中CDP-1-m、万古霉素和CDP-1-M的含量的典型色谱图。
[0043] 图2:LC-MS/MS法测定CDP-1-m(I)、万古霉素(II)、CDP-1-M(III)和内标去甲万古霉素(IV)的典型MRM色谱图,其中,A:空白血清样品;B:定量下限样品;C:典型的血液透析患者血清样品。
具体实施方式
[0044] 实施例1
[0045] 仪器、材料与试剂:
[0046] 仪器:Waters液相色谱仪,配备Waters 2487紫外检测器和Empower
数据采集与处理软件,美国Waters公司;
[0047] 材料与试剂:CDP-1标准品,批号1-TMH-108-1,购自加拿大TRC公司;万古霉素,规格1007u/mg,批号130360-201302,购自中国药品生物制品检定所;磷酸二氢钾和磷酸,分析纯,均购自凌峰试剂有限公司;乙腈,色谱纯,购自Sigma-Aldrich公司;超纯水,Milli-Q每日新鲜配制;
[0048] 实验部分:
[0049] 溶液配制:精密称取适量CDP-1标准品于5mL容量瓶中,加入超纯水配制成1053μg/mL的贮备液。采用5%乙腈水稀释成20μg/mL的工作溶液进样分析,平行6样本,获得相应的色谱峰面积;精密称取适量万古霉素标准品于5mL容量瓶中,加入超纯水配制成1000μg/mL的贮备液;采用5%乙腈水稀释成0.5μg/mL的工作溶液进样分析;
[0050] 检测条件:色谱柱为Phenomenex Luna C18柱(150×4.6mm,5μm),柱温:室温,流速:0.65mL/min,流动相为乙腈-5mM磷酸二氢钾(含0.023%磷酸)为9∶91,v/v;进样体积:20μL;分析时间:30min;紫外吸收
波长:230nm;
[0051] 结果分析:与万古霉素纯品进样结果对比后发现CDP-1标准品为含4个化合物的混合物,3.195min为一杂质峰,6.535min为CDP-1-m,13.593min为万古霉素,16.142min为CDP-1-M;以各自的色谱峰面积/总峰面积计算含量,取其平均值,CDP-1标准品中的含量分析结果如表1所示。
[0052] 表1 CDP-1标准品含量测定
[0053]
[0054] 实施例2
[0055] 仪器、材料与试剂:
[0056] 仪器:岛津LC-30AD超高效液相色谱仪(Shimadzu,日本)串联API5500三重四级杆质谱仪(AB SCIEX,美国),配备电喷雾电离源(ESI);数据采集及处理软件为Analyst 1.6.2;控温高速离心机(Thermo Fisher,德国);
电子分析天平(Mettler,瑞士);
[0057] 材料与试剂:CDP-1标准品,批号1-TMH-108-1,购自加拿大TRC公司;万古霉素,规格1007u/mg,批号130360-201302,内标去甲万古霉素,纯度83.4%,批号130338-200303,均购自中国药品生物制品检定所;乙腈,甲酸(色谱纯),购自Sigma-Aldrich公司;超纯水,Milli-Q每日新鲜配制;空白血清来源于健康志愿者;
[0058] 实验:
[0059] UPLC-MS/MS条件:Waters Acquity BEH C18(2.1×100mm,1.7μm),柱温30℃,流动相为乙腈:0.1%甲酸水,梯度洗脱,0.01~3.5min,5~15%乙腈,3.5~3.6min,15~90%乙腈,3.6~4.1min,90%乙腈,4.1~4.4min,90~5%乙腈,4.4~5.0min,5%乙腈,流速为0.3mL/min。进样体积为5μL,自动进样器温度设置为10℃;
[0060] ESI正离子多反应监测(MRM)模式;气帘气30Arb;碰撞活化解离(CAD)8;电喷雾电压5500V;离子源温度500℃;离子源气体1和2均为50psi。万古霉素、内标的碰撞能量均为18V,CDP-1碰撞能量为23V;去簇电压为100V;射入电压为10V;扫描时间为80ms。万古霉素、CDP-1和内标的碰撞室射出电压分别为15,10和12V;用于定量的离子反应分别为m/z 726.2→m/z 144.2(万古霉素,CDP-1)和m/z 718.2→m/z 144.2(内标);
[0061] 预处理条件:取血清50.0μL,分别加入25μg/mL的内标去甲万古霉素10.0μL、10%甲酸溶液,
涡流混匀,再加入200μL乙腈,涡流混匀,离心15min(13000rpm);取上清液20μL和180μL5%乙腈水混匀,涡流1min,5μL进样;
[0062] 贮备液和工作溶液配制:分别精密称取适量万古霉素纯品和CDP-1标准品于5mL容量瓶中,加入纯水配制成1000μg/mL的标准曲线贮备液,用超纯水稀释,标准系列溶液浓度为CDP-1-m/万古霉素/CDP-1-M 1.437/10.57/2.54,2.874/21.14/5.08,7.185/52.85/12.70,14.37/105.7/25.40,28.74/211.4/50.80,71.85/528.5/127和143.7/1057/254μg/mL;另分别精密称取适量万古霉素纯品和CDP-1标准品于5mL容量瓶中,加入纯水配制成
1000μg/mL和1053μg/mL的质控贮备液;称取适量内标去甲万古霉素标准品于5mL容量瓶中,加入纯水配制成1000μg/mL的内标贮备液。用超纯水稀释获得浓度为25μg/mL的内标工作溶液;
[0063] 方法验证:
[0064] 专属性:分别取空白血清50.0μL,除不加内标溶液外,按“预处理条件”项下操作,取5μL进样分析,得色谱图2A;将一定浓度的标准溶液和内标溶液加入空白血清中,依同法操作,得色谱图2B;取放置后的血清降解
稳定性样品50.0μL,依“预处理条件”项下操作,得色谱图2C;
[0065] 线性范围:取空白血清,精密加入万古霉素和CDP-1的标准系列溶液,配制出含CDP-1-m/万古霉素/CDP-1-M分别为0.1437/1.057/0.2540,0.2874/2.114/0.5080,0.7185/5.285/1.270,1.437/10.57/2.540,2.874/21.14/5.080,7.185/52.85/12.7和14.37/
105.7/25.4μg/mL血清样品,按“预处理条件”处理后进样分析,建立标准曲线,以血清中待测物浓度X为横坐标,待测物与内标的峰面积Y为纵坐标,用加权最小二乘法(W=1/x2)进行回归运算,求得回归方程,即标准曲线;CDP-1-m典型的直线回归方程为y=0.182x+
0.00237,r=0.9970;万古霉素典型的直线回归方程为y=0.133x+-0.00823,r=0.9980;
CDP-1-M典型的直线回归方程为y=0.233x+0.00466,r=0.9985;
[0066] 精密度和准确度:取空白血清,精密加入万古霉素和CDP-1的质控(QC)溶液,配制出含CDP-1-m/万古霉素/CDP-1-M分别为0.1437/1.057/0.2540(QCLL),0.4311/3.171/0.7620(QCL),2.16/15.86/3.810(QCM)和12.21/89.85/21.59μg·mL-1(QCH)血清质控样品,按“预处理条件”项下操作,按每一浓度进行6样本分析,至少2天连续测定3个批次,结果如表2表3所示。
[0067] 表2 待测物批内精密度和准确度
[0068]
[0069] 表3 待测物批内精密度和准确度
[0070]
[0071] 提取回收率和基质效应:
[0072] 取QCL、QCM和QCH血清质控样品,按“预处理条件”项下操作,按每一浓度进行6样本分析,记录峰面积Ax,在同样条件下进样相应浓度的CDP-1-m/万古霉素/CDP-1-M质控溶液,并记录峰面积As,以相应的峰面积比值Ax/As计算提取回收率;CDP-1-m、万古霉素和CDP-1-M三浓度的回收率分别在87.0~96.3%、85.3~89.9%和81.6~84.6%范围之内(表4),内标回收率为82.2%;
[0073] 分别用来自5个健康志愿者、1个患者空白血清沉淀后的基质上清液配制4浓度质控溶液,每一浓度1样本;溶血血清、脂血血清沉淀后的基质上清液配制4浓度质控溶液,每一浓度3样本;采用空白
溶剂配制相应浓度的质控溶液,每一浓度6样本;基质效应因子(%)=沉淀后基质上清液配制的样品峰面积/空白溶剂配制的样品峰面积×100%,结果显示,三个待测物和内标基质效应因子在94.3~109.2%之间,CV均小于7.5%(如表4~表6所示),结果表明,本方法的LC-MS/MS条件可有效地避免人血清样品的基质效应。
[0074] 表4 正常血清中待测物和内标提取回收率和基质效应
[0075]
[0076] 表5 溶血血清待测物和内标基质效应
[0077]
[0078] 表6 脂血血清待测物和内标基质效应
[0079]
[0080] 残留效应:在高质控样品进样完成后进空白血清样品,反复6次,未见空白血清样品中在CDP-1-m,万古霉素和CDP-1-M及内标处出峰时间有干扰,空白样品
信号均低于定量下限的20%和内标的5%;
[0081] 稳定性:配制4浓度质控样品,考察自动进样器(10℃)放置30小时和-70℃
冰箱中放置518天的稳定性,结果显示,自动进样器放置30小时各浓度的质控样品回收率均在88.9~113.4%之间,-70℃冰箱中放置518天质控样品回收率除CDP-1-m QCL为120.5%和万古霉素QCM为117.6%以外,其余浓度均在92,2~110.3%之间,表明CDP-1-m,万古霉素和CDP-1-M在自动进样器(10℃)放置30小时和-70℃冰箱中放置518天稳定。
[0082] 表7 待测物血清样品自动稳定性结果(n=3)
[0083]
[0084] 表8 待测物血清样品-70℃长期放置稳定性(n=3)
[0085]
[0086] 实施例3 临床施用
[0087] 入选12例血液透析患者(6男6女),因革兰阳性菌感染治疗需要使用万古霉素和进行TDM,不早于第2剂给药前采集谷浓度标本,静脉滴注结束后0.5-1小时采集峰浓度标本,
全血样品经3000rpm离心10分钟,取上清冷冻存放于-70℃冰箱待测,患者的人口学特征及浓度数据如表9所示,血清谷、峰浓度标本中,CDP-1(CDP-1-m+CDP-1-M)与万古霉素浓度的比值分别为5.9%-22.9%和5.1%-12.2%,若检测方法存在CDP-1的交互作用,或未对万古霉素和CDP-1进行分离,则可能导致2例(16.7%)患者剂量调整不准确,从而影响患者的个体化精准给药。
[0088] 表9 透析患者人口学特征和万古霉素及CDP-1血药浓度
[0089]
[0090] *表示为平均值±标准差[最小值-最大值]。