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一种基于流体技术制备单分散冻干微气泡的方法及其应用

阅读:337发布:2020-05-12

专利汇可以提供一种基于流体技术制备单分散冻干微气泡的方法及其应用专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 公开了一种基于 微 流体 技术 制备单分散冻干微气泡的方法及其应用。该方法通过微流体快速乳化技术获得尺寸可控的单分散乳液;所得单分散乳液进行 冷冻干燥 后,所得到中空微球即为微气泡的前驱体;将空心微球与缓冲溶液混合后,即得到单分散微气泡溶液。本方法利用微流体乳化技术制备中空微球作为微气泡的前驱体,所得微气泡冻干粉方便运输和保存,在使用时,不受仪器、场地和使用人员技术背景等要求的限制,所得到的微气泡尺寸均一,且可通过微流体技术调节微气泡的尺寸和 内核 的气体种类。在动物临床实验中,本发明的单分散冻干微气泡体现出比传统的多分散微气泡 造影剂 更强的造影效果。本发明的实验可控性强,所得微气泡的应用领域广。,下面是一种基于流体技术制备单分散冻干微气泡的方法及其应用专利的具体信息内容。

1.一种基于流体技术制备单分散冻干微气泡的方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤1,制备微流体芯片
组装微流体芯片或玻璃毛细管组装成的液滴生成装置;
步骤2,制备单分散乳液
利用机械或者气压泵作为驱动,将含有表面活性剂溶液和溶有脂质体的三氯甲烷溶液分别从水相入口和油相入口注入微流体芯片,其中水溶液中含有体积分数2.5%的Pluronic-F68表面活性剂,三氯甲烷溶液中含有0.1%-1%质量分数的脂质体,水相流量为
1-50ml/hr,油相流量为0.1-10ml/hr,水相流量与油相流量的比例为1/5-1/20,通过调节水相流量与油相流量的流量比,可制得直径为5微米至50微米且均一分布的油/水乳液;其中,脂质体由于自身的两亲性会分布在油/水乳液的界面;
步骤3,冷冻干燥
对步骤2所得的油/水乳液进行收集和静置分离,撇去上层的大部分水溶液,将剩余的乳液移入冻干机,在-80℃下超低温干燥,得到由脂质体包裹的中空微球,即单分散冻干微气泡。
2.根据权利要求1所述的一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的方法,其特征在于,所述微流体芯片为PDMS微流体芯片,所述PDMS微流体芯片的制备方法,包括以下步骤:
第一步,利用工程制图软件AutoCAD设计深度为50微米,宽度为50微米的微流体管道,并在透明塑料薄片上印刷为光刻模板,所述微流体管道有一个水相入口、一个油相入口和一个产物收集出口,所述水相入口和油相入口的口径为1mm;
第二步,使用软光刻技术将光刻模板打印在基板上,光刻模板上的图案在硅片基板的投影尺寸比为1:1;
第三步,揭模
将PDMS硅胶均匀涂抹于硅片基板上,层厚度为5mm,使用真空泵充分消除硅胶中残留的气泡之后,将硅胶移入70℃的烘箱中加热1小时,揭模后即得管道,且硅片基板可以重复使用来进行揭模;
第四步,键合
将微流体管道和玻璃基板放入等离子体反应箱中,使用紫外光照射表面1分钟后,使得A材料和玻璃基板表面充分羟基化,反应结束后迅速取出微流体管道和玻璃基板,使二者表面轻轻接触即可完成粘合,得到微流体芯片。
3.根据权利要求1所述的一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的方法,其特征在于,步骤2和步骤3中脂质体的具体成分:每100mg脂质体中含有60mg,的1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholine(1,2-二十六烷酰基-sn-甘油-3-磷酸);
10mg的1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphate,sodium salt(1,2-二棕榈酰基-sn-甘油-3-磷酸,钠盐态);20mg的1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine(1,2-二棕榈酰基-sn-甘油-3-磷酸乙醇胺);以及10mg的1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[carboxy(polyethylene glycol)-2000](1,2-二硬脂酰基-sn-甘油-3-磷酸乙醇胺-N-[羧基(聚乙二醇)-2000]。
4.根据权利要求1所述的一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的方法,其特征在于,作为改进的是,脂质体在三氯甲烷溶液中的质量分数为0.5%。
5.根据权利要求1所述的一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的方法,其特征在于,所述微流体芯片由玻璃毛细管组装成的液滴生成装置,所述液滴生成装置的制备方法,包括以下步骤:
步骤i,制管
取一根圆型毛细管作为内管,并使用毛细管拉伸机对其一端进行拉伸形成流线型收缩端口,端口尺寸为0.1毫米;再取另外一根的正方形玻璃毛细管作为外管;内管的外径须不大于外管的内径,且差值不大于0.5毫米,内管与外管在使用之前均充分清洗、烘干;
步骤ii,组装
将步骤i所得的内管小心插入外管5毫米左右,在内管远端、内外管相接处以及外管远端分别连接到工程塑料转接口,并使用速干胶小心封装在透明塑料或玻璃薄板上;微流体平台整体长度为8厘米,宽度为1厘米;内管远端、内外管相接处以及外管远端的三个转接口分别为水相入口,油相入口以及产物出口。
6.基于权利要求1制备的单分散冻干微气泡在医学超声显影上的应用。
7.根据权利要求5所述的应用,其特征在于,所述单分散冻干微气泡在应用时,需要进行换气充气处理,即对单分散冻干微气泡进行真空处理,再通入目标气体作为气泡内核,在目标气体的保护下进行密封包装,即得可用于实际使用的单分散冻干微气泡。
8.根据权利要求6所述的应用,其特征在于,所述换气充气的步骤,包括以下步骤:
步骤i,制管
将冻干微气泡放入5mL-100mL的真空瓶中,瓶口用医用橡胶塞封口,利用真空泵连接的注射器针头将瓶中气体抽干,抽气过程持续1分钟;
步骤ii,换气
将需要填充的内核气体,利用注射器针头注入真空瓶中;
步骤iii,重复抽真空和换气
重复步骤i和ii三次,确保换气过程充分,微气泡内部充分充满目标气体。
9.根据权利要求8所述的应用,其特征在于,所述内核气体为氮气、气,氟化合物,二氧化碳等气体中一种或多种混合而成。

说明书全文

一种基于流体技术制备单分散冻干微气泡的方法及其应用

技术领域

[0001] 本发明属于生物材料应用技术领域,具体涉及一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的方法及其应用。
[0002]

背景技术

[0003] 微米级的微气泡(直径1-10m)在心血管系统及浅层内脏疾病肿瘤诊断中一直受到广泛的应用(Kanaka Hettiarachchi et al Lab Chip,7,463–468(2007))。和传统的化学制剂为主的超声显影剂比起来,微气泡不仅无毒无副作用,而且能提供更清楚的显影对比和更高的信噪比。在某些特殊的病例中,例如心室裂缝的诊断,传统的化学超声显影剂很难发现病灶,而微气泡超声显影剂却能提供明显的造影效果(Mehmet Kaya et al,Bubble Sci Eng Technol.2(2),33–40(2010))。
[0004] 如今,微气泡超声显影剂已经取代了传统的化学显影剂,成为了欧美医疗市场上的主流超声显影剂。目前商业化的微气泡显影剂的主要制剂形式是冻干微胶囊,加搅拌后能形成大量的微气泡,从而得到可以进行血液注射的微气泡溶液。当微气泡随血液循环流经声波探测区域的时候,由于微气泡(气体)和周边组织(液体和固体)的声学反射性质的较大区别,我们可以清楚地识别微气泡的分布。尤其是当超声波频率接近微气泡自身的共振频率时,微气泡能提供极强的反射信号对比(Hangyu Lin,et al,Med Biol Eng Comput 54,1317–1330(2016))。时至今日,微气泡超声显影剂的全球市场规模已经超过了30亿美元,并保持了26%的年均增长率(Global Microbubbles/Ultrasound Contrast Agents Market Outlook:2015-2021)。
[0005] 然而,目前市面上的商品化微气泡医疗超声显影剂依然有诸多不足。首先,现在的微气泡医疗造影剂使用的微气泡全部是多分散微气泡,即气泡的大小不同,尺寸分布范围从1微米到10微米不等。而微气泡的超声共振频率与其本身的尺寸成反比关系(共振频率*气泡半径≈3m/s),大小不同的微气泡的超声共振频率差异很大(Yoonjee Park,et al;Langmuir 2012,28,3766-3772)。在实际的诊断中,多分散微气泡造影剂中实际上只有很少的一部分微气泡处于超声谐振波段,这不仅降低了信号反射的强度,降低了信噪比,也增加了气泡破裂融合从而堵塞血管的险,而且使得造影剂的生产和使用变得低效和浪费。
[0006] 现有的的技术发明也存在不同的缺陷。例如申请号201610002404.3和申请号201620004350.X都公开了一种生产微气泡的微流控芯片专利技术。它们都可以通过向微通道内注入气体和液体的方法,调节液体流量和气体压强,实时生成微气泡。与本专利相比,它们的局限在于(1)微流体芯片的运行和维护需要使用者具备一定的专业知识技术背景和技术操作能,(2)单一通道微流体芯片的微气泡的制备效率低下,据文献报道,制备直径5微米的微气泡的单通道微流体芯片的生产速率为每秒一百万个(Lab on a Chip 11(12),
2023-2029),则制备1mL含有109个微气泡的溶液需要15~20分钟,难以响应临床应用的即时需求;(3)利用传统的微流体方法生产微气泡难以做到独立调节微气泡的大小和浓度,这是因为微气泡的尺寸与流体的流量成负相关关系,要制备较小的微气泡必须要较高的液体流量,从而带来较低的气泡浓度,而在实际的超声造影应用中,较低的气泡浓度通常难以提供有效的声学反射;(4)鉴于微流体实际生产微气泡的低速率,在漫长的制备、收集、转移和运输过程中,微气泡的稳定性通常也会收到影响,进一步地降低了微气泡的产率和使用效果。
[0007]

发明内容

[0008] 针对现有技术的种种不足,本发明的目的在于提供一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的方法及其应用,该方法利用微流体乳化技术制备单分散乳液作为微气泡前驱体,脂质体作为微气泡外壳材料,得到了单分散的冻干微气泡。与市面上其他的商品化微气泡显影剂相比,该方法的主要优势为(1)所制得的微气泡尺寸均一性高,且可通过微流体技术进行调节气泡大小(2)超声显影的增强效果更好。与其他的通过微流体技术直接制备微气泡的专利发明相比,该方法的主要优势在于(1)对使用者无技术背景要求,(2)在临床使用中无需等待微气泡的生产,冻干粉微气泡可以即溶即用,(3)微气泡的浓度和大小可以独立调控,(4)冻干微气泡粉的稳定性好,在长期的存储后也可以即时使用,(5)微气泡内核的气体种类可以为某一种气体或者数种气体的混合物,且选择范围广泛。
[0009] 为解决现有技术问题,本发明采取的技术方案为:一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的方法,包括以下步骤:
步骤1,制备微流体芯片
组装微流体芯片或玻璃毛细管组装成的液滴生成装置;
步骤2,制备单分散乳液
利用机械或者气压泵作为驱动,将含有表面活性剂的水溶液和溶有脂质体的三氯甲烷溶液分别从水相入口和油相入口注入微流体芯片,其中水溶液中含有体积分数2.5%的Pluronic-F68表面活性剂,三氯甲烷溶液中含有质量分数0.1%-1%的脂质体,水相流量为
1-50ml/hr,油相流量为0.1-10ml/hr,水相流量与油相流量的比例为1/5-1/20,调节水相流量与油相流量的流量比,可制得直径为5-50μm且均一分布的油/水乳液;其中,脂质体由于自身的两亲性会分布在油/水乳液的界面;
步骤3,冷冻干燥
对步骤2所得的油/水乳液进行收集和静置分离,撇去上层的水溶液,将剩余的乳液移入冻干机,在-80℃下超低温干燥,得到由脂质体包裹的中空微球,即单分散冻干微气泡。
[0010] 作为改进的是,所述微流体芯片为PDMS微流体芯片,所述PDMS微流体芯片的制备方法,包括以下步骤:第一步,利用工程制图软件AutoCAD设计深度为50微米,宽度为50微米的微流体管道,并在透明塑料薄片上印刷为光刻模板,所述微流体管道有一个水相入口、一个油相入口和一个产物收集出口,所述水相入口和油相入口的口径为1mm;
第二步,使用软光刻技术将光刻模板打印在基板上,光刻模板上的图案在硅片基板的投影尺寸比为1:1;
第三步,揭模
将PDMS硅胶均匀涂抹于硅片基板上,层厚度为5mm,使用真空泵充分消除硅胶中残留的气泡之后,将硅胶移入70℃的烘箱中加热1小时,揭模后即得管道,且硅片基板可以重复使用来进行揭模;
第四步,键合
将微流体管道和玻璃基板放入等离子体反应箱中,使用紫外光照射表面1分钟后,使得A材料和玻璃基板表面充分羟基化,反应结束后迅速取出微流体管道和玻璃基板,使二者表面轻轻接触即可完成粘合,得到微流体芯片。
[0011] 作为改进的是,步骤2和步骤3中脂质体的具体成分:每100mg脂质体中含有60mg,的1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholine(1,2-二十六烷酰基-sn-甘油-3-磷酸);10mg的1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphate,sodium salt(1,2-二棕榈酰基-sn-甘油-3-磷酸,钠盐态);20mg的1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine(1,2-二棕榈酰基-sn-甘油-3-磷酸乙醇胺);以及10mg的1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[carboxy(polyethylene glycol)-2000](1,2-二硬脂酰基-sn-甘油-3-磷酸乙醇胺-N-[羧基(聚乙二醇)-2000]。
[0012] 作为改进的是,脂质体在三氯甲烷溶液中的质量分数为0.5%,在此比例下,脂质体乳液的稳定性和利用性较高。
[0013] 作为改进的是,所述微流体芯片由玻璃毛细管组装成的液滴生成装置,所述液滴生成装置的制备方法,包括以下步骤:步骤i,制管
取一根圆型毛细管作为内管,并使用毛细管拉伸机对其一端进行拉伸形成流线型收缩端口,端口尺寸为0.1毫米;再取另外一根的正方形玻璃毛细管作为外管;内管的外径须不大于外管的内径,且差值不大于0.5毫米,内管与外管在使用之前均充分清洗、烘干;
步骤ii,组装
将步骤i所得的内管小心插入外管5毫米左右,在内管远端、内外管相接处以及外管远端分别连接到工程塑料转接口,并使用速干胶小心封装在透明塑料或玻璃薄板上;微流体平台整体长度为8厘米,宽度为1厘米;内管远端、内外管相接处以及外管远端的三个转接口分别为水相入口,油相入口以及产物出口。
[0014] 上述制备的单分散冻干微气泡在超声显影上的应用。
[0015] 作为改进的是,述单分散冻干微气泡在应用时,需要进行换气充气处理,即对单分散冻干微气泡进行真空处理,再通入目标气体作为气泡内核,在目标气体的保护下进行密封包装,即得可用于实际使用的单分散冻干微气泡。
[0016] 进一步改进的是,所述换气充气的步骤,包括以下步骤:步骤i,制管
将冻干微气泡放入5mL-100mL的真空瓶中,瓶口用医用橡胶塞封口,利用真空泵连接的注射器针头将瓶中气体抽干,抽气过程持续1分钟;
步骤ii,换气
将需要填充的内核气体利用注射器针头注入真空瓶中;
步骤iii,重复抽真空和换气
重复步骤i和ii三次,确保换气过程充分,微气泡内部充分充满目标气体。
[0017] 进一步改进的是,所述内核气体为氮气、气,氟化合物,二氧化碳等气体中一种或多种混合而成。
[0018] 有益效果:与现有技术相比,本发明一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的方法及其应用,即通过使用微流体技术,制备出单分散的脂质体乳液;再将脂质体乳液进行冻干处理,得到尺寸均一的脂质体为外壳的空心微球;最后将脂质体微球溶于水溶液之后,就得到了单分散的微气泡超声显影剂。具体优势在于:
(1)脂质体乳液大小均一,形成的微气泡单分散性好。我们用微流体制备的脂质体乳液尺寸分布较窄,分散度值(Polydispersity)小于0.05,在冻干之后形成的空心脂质体微球仍能有效保持尺寸的单分散性。在溶于生理盐水之后,形成的微气泡依然具备高度的尺寸均一性。而市面上常见的微气泡造影剂的尺寸分散度值(Polydispersity)一般大于0.5,呈现明显的大小差异。
[0019] (2)微乳液和微气泡的稳定性高。这是因为我们采用的脂质体具备水油两亲性,能在水-油界面自发地形成自组装纳米结构,起到了包裹层和表面活性剂的作用。而且微流体乳化技术能制造大小均一的乳液液滴,极大地降低了奥斯瓦尔德熟化效应。这些优点都是已有的商品化微气泡造影剂产品所不具备的。
[0020] (3)单分散微气泡的安全性更高。首先我们使用的脂质体属于安全无毒的生物材料,在体内血液循环中不会带来危害;其次我们的微气泡大小高度均一,相比传统的多分散的微气泡产品,更不容易发生破裂融合,从而降低了堵塞毛细血管的风险。
[0021] (4)微流体生产平台对原料的利用率高(>99%),能耗低,生产过程绿色环保,对产物的尺寸、产量可以实现精确的调控。而且微流体芯片的制备过程简单易重复,具有很强的放大规模生产的潜力。
[0022] (5)本方法所得微气泡冻干粉方便运输、保存和使用,不受仪器、场地和使用人员技术背景等要求的限制。
[0023] (6)所得到的微气泡尺寸单一稳定,且可通过微流体技术调节微气泡的尺寸,还可以根据需要对微气泡内核的气体种类进行调整,这是传统的商业化产品和已有的微流体技术无法同时兼顾的特点。
[0024] (7)在动物临床实验中,本发明的单分散冻干微气泡体现出比传统的多分散微气泡造影剂更强的造影效果。本发明的实验可控性强,所得微气泡的应用领域广。
[0025]附图说明
[0026] 图1为本发明的一种制备PDMS微流体芯片方法的流程图,其中,1-图案模板,2-紫外曝光+光刻胶固化,3-未固化光刻胶剥除,4-制备PDMS板,5-PDMS板剥除,6-留出井口和出口;图2为微流体芯片管道的设计示意图;
图3为实际生产中的微流体芯片的图片;
图4为本发明实施例1制备一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的相关实物图,其中,(A)为实施例1进行乳液生产时在显微镜下的微流体管道的实物图,黑色参照标尺为
100微米;(B)为白色脂质体乳液;(C)为单分散气泡超声显影剂冻干粉;(D)为单分散气泡超声显影剂冻干粉浸水之后获得的微气泡溶液;
图5为不同微气泡造影剂的气泡尺寸分布情况,(A)为实施例1制备的单分散冻干微气泡,(B)为已有商品化(声诺维Sonovue)的微气泡超声显影剂;
图6为小鼠肾脏临床超声显影对比,(A)为传统商业化(声诺维Sonovue公司)微气泡造影剂,(B)为本发明生产的微流体微气泡冻干粉造影剂;
图7为实施例2的玻璃毛细管微流控芯片。
[0027]

具体实施方式

[0028] 下面结合附图和具体实施例对本发明作进一步描述。
[0029] 实施例1一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡方法,制备步骤如下:
(1)制图:使用工程制图软件AutoCAD设计微流体管道,其中有一个水相进口,一个油相进口,一个产物收集出口,进出口的直径为1毫米,管道深度为50微米,宽度为100微米;微流体管道的结构如图2所示;
(2)制模:将步骤(1)所得的光刻模板使用软光刻技术(soft lithography)等比例投影打印在硅片基板上,尺寸比为1:1。管道由SU-8 2100光刻胶构成,管道深度为50微米,宽度控制为100微米;
(3)揭模:将二甲基硅氧烷单体和固化剂按10:1的比例混合均匀后,倾涂于步骤(2)所得硅片模板上,PDMS硅胶厚度为5毫米。使用真空泵消除硅胶中残留的气泡1小时之后,将硅胶移入70℃的烘箱中加热1小时,揭模后即得PDMS管道;
(4)键合:将PDMS管道和一片普通的显微镜载玻片放入等离子体反应箱中,使用紫外光照射表面1分钟。反应结束后迅速取出PDMS和玻璃基板,使二者表面轻轻接触即可完成键合,得到微流体芯片。芯片总尺寸为5cm×2cm;
(5)乳化:将20mL含有表面活性剂的水溶液和含有脂质体(1mg/mL)的5mL三氯甲烷溶液分别从水相入口和油相入口注入步骤(4)所得的微流体芯片。其中水:三氯甲烷的体积流速比为5mL/hr:1.25mL/hr,所产生的脂质体乳液为大小均一,约为10微米的单分散乳液;
(6)冻干:对步骤(5)所得脂质体乳液和水的混合物进行收集,静置分离10分钟后,撇去上层的水溶液,将剩余的脂质体乳液移入冻干机,在-80度下超低温干燥24小时,得到脂质体作为外壳的中空微球,即单分散冻干微气泡。
[0030] 在应用过程中,只需要取单分散气泡加入生理盐水,轻轻振荡后,即可获得微气泡溶液。微乳液,脂质体微球和微气泡的尺寸测定使用显微镜拍照对比标尺的方法,测试结果表明本发明提供的微气泡尺寸约为3微米,单分散性相比传统商品化产品有较大的提高,真空干燥包装下脂质体空心微球的稳定性超过3个月。
[0031] 在动物实验中,我们以6周龄CD1型小白鼠为动物模型,从尾根部静脉以10μL/s的流速注射100μL微气泡溶液,在18MHz的超声探测器下对其肾脏部位进行造影成像。通过对比发现,本发明生产的微流体微气泡相比传统的商业化微气泡造影剂有明显的造影质量提高(图6),能充分清晰地呈现小鼠肾脏的深层组织结构,而传统产品存在大量的暗影,在实际应用中难以区分病灶和周边组织边界。
[0032] 实施例2一种基于微流体技术制备单分散冻干微气泡的玻璃毛细管微流体技术方法,制备步骤如下:(1)制管:我们使用一根长度为2厘米,内径0.5毫米,外径0.7毫米的圆型玻璃毛细管(CM Scientific)作为内管,并使用毛细管拉伸机(P-97,Sutter Instrument Company)对其一端进行拉伸形成流线型收缩端口,端口尺寸为0.1毫米;我们使用另外一根长度为5厘米,内边长0.7毫米,外边长1毫米的正方形玻璃毛细管(CM Scientific)作为外管。内外管在使用之前均充分清洗、烘干。
[0033] (2)组装:将步骤(1)所得的内管小心插入外管约5毫米左右,在内管远端、内外管相接处以及外管远端分别连接到工程塑料转接口(Nanoports),并使用速干胶小心封装在透明塑料或玻璃薄板上。微流体平台整体长度约为8厘米,宽度为1厘米。内管远端、内外管相接处以及外管远端的三个转接口分别为水相入口,油相入口以及产物出口。结构如图7所示。
[0034] (3)乳化:将20mL含有表面活性剂的水溶液和含有脂质体(1mg/mL)的5mL三氯甲烷溶液分别从水相入口和油相入口注入步骤(4)所得的微流体芯片。其中水:三氯甲烷的体积流速比为5mL/hr:1.25mL/hr,所产生的脂质体乳液为大小均一,约为15微米的单分散乳液;(4)冻干:对步骤(3)所得脂质体乳液和水的混合物进行收集,静置分离10分钟后,撇去上层的水溶液,将剩余的脂质体乳液移入冻干机,在-80度下超低温干燥24小时,得到脂质体作为外壳的中空微球,即单分散冻干微气泡;
在应用过程中,只需要取单分散气泡超声显影剂加入生理盐水,轻轻振荡后,即可获得微气泡溶液。微乳液,脂质体微球和微气泡的尺寸测定使用显微镜拍照对比标尺的方法,测试结果表明本发明提供的微气泡尺寸约为7微米,单分散性相比传统商品化产品有较大的提高,真空干燥包装下脂质体空心微球的稳定性超过3个月。
[0035] 需要补充说明的是,本例中内管适宜尺寸可在0.1毫米至2毫米之间,外管适宜尺寸可在0.5毫米至1厘米之间,本例所描述具体数值均为优化实验方案。
[0036] 对比例1目前微气泡商业化产品类型可分为微气泡冻干粉和即时生产的微气泡两大类型。微气泡冻干粉产品的缺点如前文所述,难以实现微气泡的尺寸均一化,使得实际的超声显影效果低下;即时生产的微气泡技术主要基于微流体技术,荷兰的Tide Microfluidics公司(http://tidemicrofluidics.nl/applications/medical-imaging)研制出一种可以即时生产微气泡的微流体生产平台,但是操作、维护微流体设备对使用人员的专业知识背景要求较高,难以在普通的医院开展推广应用,而且该平台的生产能力较低,制备气泡的等待时间较长,不适应医院和患者的大需求量。
[0037] 与背景技术中提到的两篇专利相比,本发明首先并不直接使用复杂的两芯片键合,只使用单芯片和玻璃基底键合,简化了制造步骤并降低了键合难度;其次,本发明不需要使用气体来直接制造气泡,而仅使用油/水流体生产前驱体乳液,与直接制造气泡相比,生产前驱体乳液的方法不需要额外操纵压缩气体装置;另外,上述专利得到的微气泡必须即生产即用,难以储存、携带和运输,且对使用者有较高的技术知识要求,而本发明最后得到的产物是冻干气泡粉末,便于储存、携带和运输,使用时只需浸水即得微气泡溶液,对使用者没有技术槛要求;再次,本发明的微气泡内核气体可以为任意气体或混合气体的组合,这是传统商品化产品和现有微流体技术所无法满足的优势。
[0038] 综上所述,本专利通过使用微流体乳化技术,在不同材料的微流体平台(如PDMS,玻璃毛细管)上均成功地制备了单分散的脂质体微气泡。与传统的商业化微气泡产品相比,本发明的制备的微气泡具备尺寸大小均一可控、活体实验中的超声显影的效果更好等重要优势;与现有的其他微流体技术生产的微气泡相比,本产品的使用更加简单易操作、冻干微气泡的稳定性更好、更容易储存转移及运输,而且微气泡的内核可以为任意一种气体或者几种气体的混合物。本专利为探索微气泡在医疗产品领域的广泛应用提供了可靠的技术方案。
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