1 |
环境胁迫效应启动子 |
CN01145739.2 |
2001-11-22 |
CN1373222A |
2002-10-09 |
筱崎一雄; 关原明; 楠城时彦 |
本发明提供了一种胁迫反应启动子。本发明的环境胁迫反应启动子包含下列(a)、(b)or(c)的DNA;(a)由选自序列号:1至18的任意核苷酸序列组成的DNA;(b)由含有相对于选自序列号:1至18的任意核苷酸序列缺失、取代或添加了一个或多个核苷酸的一种核苷酸序列组成的并具有充当一种环境胁迫反应启动子功能的DNA;以及(c)在严格条件下与由选自序列号:1至18的任意核苷酸序列组成的DNA杂交,并且具有充当一种环境胁迫反应启动子的DNA。 |
2 |
环境胁迫应对启动子和编码环境胁迫应对转录因子的基因 |
CN02827262.5 |
2002-11-15 |
CN1628170A |
2005-06-15 |
筱崎一雄; 关原明; 藤田美纪 |
本发明提供了胁迫应对启动子,本发明的环境胁迫应对启动子包括下面的(a),(b)或(c)的DNA:(a)由选自SEQ ID NO:1到90的任意核苷酸序列组成的DNA;(b)由包括相对于选自SEQ ID NO:1到90的任意核苷酸序列的一个或几个核苷酸缺失、替换或添加,并且作为环境胁迫应对启动子起作用核苷酸序列组成的DNA;和(c)在严格条件下与由选自SEQ ID NO:1到90的任意核苷酸序列组成的DNA杂交,并且作为环境胁迫应对启动子起作用的DNA。 |
3 |
环境胁迫应对启动子和编码环境胁迫应对转录因子的基因 |
CN02827262.5 |
2002-11-15 |
CN100359012C |
2008-01-02 |
筱崎一雄; 关原明; 藤田美纪 |
本发明提供了胁迫应对启动子。本发明的环境胁迫应对启动子包括下面的(a),(b)或(c)的DNA:(a)由选自SEQ ID NO:1到90的任意核苷酸序列组成的DNA;(b)由包括相对于选自SEQ ID NO:1到90的任意核苷酸序列的一个或几个核苷酸缺失、替换或添加的核苷酸序列组成,并且作为环境胁迫应对启动子起作用的DNA;和(c)在严格条件下与由选自SEQ ID NO:1到90的任意核苷酸序列组成的DNA杂交,并且作为环境胁迫应对启动子起作用的DNA。 |
4 |
对植物赋予环境胁迫耐性的方法 |
CN201380020335.3 |
2013-04-17 |
CN104220594A |
2014-12-17 |
近藤聪; 大音德; 小川健一; 逸见健司 |
对植物赋予环境胁迫耐性或者提高植物的环境胁迫耐性。通过使酪氨酸磷酸酶基因(At1g71860)的表达量改变从而对植物体赋予环境胁迫耐性。 |
5 |
环境胁迫蛋白CsFKBP53及其应用 |
CN202410123741.2 |
2024-01-30 |
CN117946233A |
2024-04-30 |
葛红娟; 宋永骏; 刘丹丹; 马荣群; 黄粤; 孙红涛; 孙吉禄; 纪高尚 |
本发明公开了一种环境胁迫蛋白CsFKBP53,其获取自茶树云抗10号(C.sinensis var.Assamica cv.Yunkang10),其氨基酸序列包括如SEQ ID NO.1所示的序列。本发明还提供了上述环境胁迫蛋白CsFKBP53在提高植物低温抗性中的应用。本发明利用实时荧光定量qRT‑PCR方法检测低温处理条件下云抗10号CsFKBP53基因的表达量变化,证明CsFKBP53对于低温胁迫具有明显的正向响应情况。通过将CsFKBP53转化拟南芥,验证了过表达CsFKBP53基因增强了拟南芥植株的抗寒性。 |
6 |
一种耐环境胁迫菌株G1-3及其应用 |
CN202211499960.8 |
2022-11-28 |
CN116515667A |
2023-08-01 |
苟中军; 王斌; 屈明成; 杜江; 黄巧; 邹滢 |
本发明提供一种耐环境胁迫菌株G1‑3及其应用,所述耐环境胁迫菌株G1‑3分类命名为副干酪乳杆菌(Lactobacillus paracasei)G1‑3,从贵州苗族酸汤中筛选得到,本发明提供的耐环境胁迫菌株G1‑3具有多重耐受性,能够耐高温、耐高糖、耐高乙醇、耐高盐、耐低酸、耐胆盐环境胁迫。本发明还涉及耐环境胁迫菌株G1‑3在制备发酵酸汤产品中的应用。 |
7 |
一种筛选环境胁迫响应启动子的方法 |
CN201611162858.3 |
2016-12-15 |
CN106520905A |
2017-03-22 |
李霞; 李飞飞; 李炳志; 元英进 |
本发明属于生物技术领域,提供了一种筛选环境胁迫响应启动子的方法,构建启动子文库,活化启动子文库表征菌株,然后在不同胁迫条件下培养,测定OD600和荧光强度,对不同组分培养基及不同培养条件的荧光强度进行分析,挖掘环境响应启动子。本发明所述方法基于酿酒酵母V号染色体天然启动子文库,实现全染色体尺度的启动子在特定培养条件下的定量表征及挖掘,筛选得到响应不同环境条件的启动子。本发明所述方法还可应用于其他启动子文库响应不同环境条件的启动子的筛选,也可应用于响应其他条件启动子的筛选,系统方便有效直观地挖掘出目标胁迫响应启动子。 |
8 |
诱导植物的环境胁迫耐性的方法 |
CN202180043221.5 |
2021-06-17 |
CN115942872A |
2023-04-07 |
武田泰斗; 田原优树; 佐藤诚一 |
提供诱导植物的环境胁迫耐性的技术。通过组合使用脱落酸样物质(脱落酸、其激动剂等)和含氮化合物(氨基酸、氨基酸衍生物等)来诱导植物的环境胁迫耐性。 |
9 |
一株耐环境胁迫菌株XN-K13及其应用 |
CN202011034675.X |
2020-09-27 |
CN112143678B |
2022-05-10 |
李有志; 樊宪伟; 黄巧 |
本发明公开了一株耐环境胁迫菌株XN‑K13,所述耐环境胁迫菌株XN‑K13分类命名为路德维希肠杆菌(Enterobacter ludwigil)XN‑K13,于2020年5月25日保藏于中国典型培养物保藏中心,地址为中国湖北省武汉市武昌珞珈山,保藏号为CCTCC NO:M 2020145。本发明提供的耐环境胁迫菌株XN‑K13能够耐缺钾、耐高盐碱、耐重金属、耐干旱环境胁迫,耐环境胁迫菌株XN‑K13还能够提高植物耐环境胁迫的能力,耐环境胁迫菌株XN‑K13对盐胁迫下、镉(Cd)胁迫下、干旱胁迫下的玉米种子和幼苗的种子萌发率、须根数、芽长、胚根长、下胚轴长、幼苗干重、根干重均具有显著的促进作用。 |
10 |
一株耐环境胁迫菌株XN-K13及其应用 |
CN202011034675.X |
2020-09-27 |
CN112143678A |
2020-12-29 |
李有志; 樊宪伟; 黄巧 |
本发明公开了一株耐环境胁迫菌株XN‑K13,所述耐环境胁迫菌株XN‑K13分类命名为路德维希肠杆菌(Enterobacter ludwigil)XN‑K13,于2020年5月25日保藏于中国典型培养物保藏中心,地址为中国湖北省武汉市武昌珞珈山,保藏号为CCTCC NO:M 2020145。本发明提供的耐环境胁迫菌株XN‑K13能够耐缺钾、耐高盐碱、耐重金属、耐干旱环境胁迫,耐环境胁迫菌株XN‑K13还能够提高植物耐环境胁迫的能力,耐环境胁迫菌株XN‑K13对盐胁迫下、镉(Cd)胁迫下、干旱胁迫下的玉米种子和幼苗的种子萌发率、须根数、芽长、胚根长、下胚轴长、幼苗干重、根干重均具有显著的促进作用。 |
11 |
对植物赋予环境胁迫耐性的方法 |
CN201380020335.3 |
2013-04-17 |
CN104220594B |
2017-03-01 |
近藤聪; 大音德; 小川健一; 逸见健司 |
对植物赋予环境胁迫耐性或者提高植物的环境胁迫耐性。通过使酪氨酸磷酸酶基因(At1g71860)的表达量改变从而对植物体赋予环境胁迫耐性。 |
12 |
一种利用环境胁迫强化红球菌降解苯胺的方法 |
CN202010695689.X |
2020-07-17 |
CN111908620B |
2022-09-13 |
谭周亮; 王臣; 陈杨武; 周后珍; 谢翼飞; 李旭东 |
本发明公开了一种利用环境胁迫强化Rhodococcus sp.降解苯胺的方法,属于环境污染生物强化处理领域。本发明的方法主要根据Rhodococcus sp.对苯酚、NaCl、苯胺、低温(15~25℃)胁迫的响应相同或相似的原理,使用苯酚、NaCl、低温对Rhodococcus sp.进行预处理,提高非生物环境胁迫下Rhodococcus sp.对苯胺的降解能力。本发明的方法提高苯胺处理能力效果显著,且工序简单方便、成本低、无二次污染,可广泛应用于工业废水处理、土壤修复、地下水修复等场景。 |
13 |
一种利用环境胁迫强化红球菌降解苯胺的方法 |
CN202010695689.X |
2020-07-17 |
CN111908620A |
2020-11-10 |
谭周亮; 王臣; 陈杨武; 周后珍; 谢翼飞; 李旭东 |
本发明公开了一种利用环境胁迫强化Rhodococcus sp.降解苯胺的方法,属于环境污染生物强化处理领域。本发明的方法主要根据Rhodococcus sp.对苯酚、NaCl、苯胺、低温(15~25℃)胁迫的响应相同或相似的原理,使用苯酚、NaCl、低温对Rhodococcus sp.进行预处理,提高非生物环境胁迫下Rhodococcus sp.对苯胺的降解能力。本发明的方法提高苯胺处理能力效果显著,且工序简单方便、成本低、无二次污染,可广泛应用于工业废水处理、土壤修复、地下水修复等场景。 |
14 |
用修饰的DREB2A基因调节植物中的环境胁迫耐受 |
CN200480025695.3 |
2004-07-07 |
CN1950503B |
2012-01-04 |
筱崎和子; 佐久间洋 |
本发明涉及修饰的转录因子基因DREB2A及其用于调节植物中的环境胁迫耐受的用途。 |
15 |
具有对环境胁迫增加的耐性的植物细胞和植物 |
CN200580040076.6 |
2005-09-23 |
CN101558158A |
2009-10-14 |
B·麦克尔西; G·普勒舍; P·普齐奥; H·维尔德; A·沙尔多南 |
本发明总体上涉及经转化的植物细胞和植物,其包含导致与未转化的野生型细胞相比较对环境胁迫增加的耐性和/或抗性的失活或下调的基因,以及产生此类植物细胞或植物的方法。本发明还总体上涉及与相应的未转化野生型植物细胞相比较具有对环境胁迫增加的耐性和/或抗性的经转化的植物细胞,产生、筛选和繁殖此类植物细胞或植物的方法以及检测植物细胞或植物中胁迫的方法。 |
16 |
用修饰的DREB2A基因调节植物中的环境胁迫耐受 |
CN200480025695.3 |
2004-07-07 |
CN1950503A |
2007-04-18 |
筱崎和子; 佐久间洋 |
本发明涉及修饰的转录因子基因DREB2A及其用于调节植物中的环境胁迫耐受的用途。 |
17 |
监控生长和检测植物中环境胁迫的方法 |
CN96197123.1 |
1996-08-14 |
CN1108094C |
2003-05-14 |
A·K·穆雷 |
一种测定植物中环境胁迫,尤其是棉花作物中水胁迫的方法,该方法基于冷水提取植物组织如棉纤维。通过高pH阴离子交换色谱法分析提取物,以分离和鉴别由冷水提取的糖类、寡糖类和其它葡糖共轭体。提取的碳水化合物代表了一种用于检测环境胁迫的独特的灵敏的手段。受环境胁迫的植物会显示提取碳水化合物的质和量的变化。提取的碳水化合物的变化可以用于指示什么时候需要进行灌溉或对生长条件的其它调整。 |
18 |
高产电活性和环境胁迫耐受性的基因工程菌 |
CN201611093980.X |
2016-12-02 |
CN106520653A |
2017-03-22 |
骆健美; 王敏; 王婷婷; 李晓; 申雁冰; 郑宇 |
本发明涉及一种高产电活性和环境胁迫耐受性的基因工程菌,将铜绿假单胞菌PAO1基因组中乳酸脱氢酶基因ldhA敲除,获得PAO1敲除菌株;再将耐辐射异常球菌的全局调控因子IrrE导入ldhA-中,获得基因工程菌株ldhA--irrE。经过化学剂处理后的菌体接种接种微生物燃料电池后,产生的电压和功率密度分别比野生型菌株提高了46.76%和53.33%,系统达到稳定的时间缩短了28.57%,系统内阻降低了12.66%,聚乙二醇处理下的电压为543,功率密度为207,稳定时间130h,内阻达到420.32。且工程菌株在饥饿条件、高酸碱条件、高盐条件下的存活率较野生型菌株均提高1倍。 |
19 |
一种用于海水环境胁迫研究的实验方法和系统 |
CN201510743902.9 |
2015-11-05 |
CN105191844A |
2015-12-30 |
王昭萍; 闫路路; 于瑞海; 苏家齐 |
本发明公开了一种用于海水环境胁迫研究的实验方法和系统。该实验方法利用点滴法向养殖水槽中加入海水环境胁迫的母液,利用混合装置使母液与周围海水混匀,实现了贝类养殖环境的逐渐变化;该系统包括盛装环境胁迫母液的环境胁迫装置和位于其下方的养殖装置,所述环境胁迫装置包括上方设有进水口密封螺盖的密闭蓄水槽,该密闭蓄水槽的下方分别连有进气管和出液软管,所述出水软管上还设有变速螺钮;所述养殖装置为盛装有海水的养殖水槽,且该养殖水槽的底部还设有充氧装置;母液通过出液软管以悬空滴加的方式混合入养殖水槽中。本发明使双壳贝类的生存环境真正实现渐变,从而避免了其它干扰因子,提高了对海水环境胁迫实验研究的准确性和精确度。 |
20 |
对环境胁迫具有提高的耐性的植物细胞和植物 |
CN200480016676.4 |
2004-04-15 |
CN1813060A |
2006-08-02 |
P·普齐奥; A·沙尔多南; 陈若英; P·普恩特 |
本发明一般性涉及转化的植物细胞和植物以及制备这种植物细胞或植物的方法,所述植物细胞或植物含有导致与未转化野生型细胞相比对环境胁迫提高耐性和/或抗性的失活或下调的基因。本发明还一般性涉及与相应的未转化野生型植物细胞相比具有改变的代谢活性的转化的植物细胞以及产生、筛选和培育这样的植物细胞或植物的方法和检测植物细胞或植物中胁迫的方法,其中通过失活或下调的基因改变代谢活性并导致与相应未转化野生型植物细胞相比对环境胁迫提高的耐性和/或抗性。 |