正向和反向ABO血型的同步测定

正向和反向ABO血型的同步测定

本申请中参考了许多的专利和论文。将这些专利和论文的全部公开内容 弓f进本申请中作为参考是为了更详尽地描述在本文所描述和要求的发明以前本 技术领域的技术人员已知的现有技术的状况。

本发明涉及血型测定的领域，尤^^及正向和反向血型测定的同步测定。

血型血清学要求在涉及病人输血或器官移植之前，需要测定血液捐献者 和病人受体间的血细胞相容性。血细胞相容性是由病人血清中的抗体与捐献者 血细胞上的，亢原不发生免疫反应来确定的。

许多不同的血型抗原被发现存在于每个个体的红血细胞的表面上。这些 抗原，遗传基因的^，以结合條在，除了同一对双鹏台外，所有个体间的 这些结合体似乎是独特的。血型检测一般是Mil检测红细胞来确定明附抗原存 在，明附抗原不存在的过程，通常采用t鹏领航原的抗体进行检测。另外，当 一个人在他的或她的红血细胞上没有特定的红细胞抗原时，他的或她的血清可 肯给有该抗原的抗体。抗体是否存在于血清中决定于人体的免疫系统以前是否 被该特定抗原或与该抗原非常类似的物质激发并产生过应答鹏。例如，红血 细胞是A型的人，即红细胞上具有"A"抗原，他的或她的血清中有抗B抗体。 因此，如點匕人被输入B型血液，就会发生免疫反应而弓跑严重的临床后果。

作为另外一方面的考虑，应该注意到人体经常与花粉、食物、细菌和病 毒中的抗原接触。这些"天然"抗原中的一些抗原明显地与于人的血型抗原相 类似，以致于它们肯辣l微几乎每一个接触的人来产生抗体。因此，一定的抗体 应该存在于红细胞中缺少互补抗原的任何人的血清中。对于ABO系统，这确实 如此，因此，经常对病A/捐献者的血清进行第二种确定试验。该检测血清中AB0 血型系统中的预期抗体试验被称作"反向"血型检测。

ABO血型系统的抗体通常是免疫球蛋白M (IgM)。这些抗体的每个分子具 有十个抗原结合位点。该工gM抗体足够大以致跨越了红血邻胞之间的距离，因 此当对其进行离心时，细胞将以"细胞-抗体-细胞-抗体"的网格形式结合在 一起并将保掛疑献态。例如，如果抗-A加到血型A或血型AB细胞中并离心混合物，当重新悬浮时，细胞将保持凝集的形式。用同样的抗体，血型o和血

型B细胞将以分离的细胞形式悬浮。由一种抗体，诸如IgM抗体弓胞的凝集， 被称作直擦麟。

输血医学中，由于上述原因，最常进行的试验是测定AB0血型。现有技 术是分别测定红细胞上的抗原A、 B，有时是A+B —起测定（正向型)；和确定 (交叉检测）检测血清或血浆中的抗-A和抗-B抗体（反向型)。因此，最少采 用4次试验，但通常采用7次分i式验（样品红细胞上的抗原A、 B、 A+B;采用 AP A2、 B、 0试剂红细胞，血清/血浆样品中的抗-A和抗-B)。从这些测型操作 的每一个沈验中得到（正向和反向类型）的结果是一致的。因此，仅在美国， 血液中心每年大约要进行104000000次测定血型的试验。

自20世纪初期以来，称作"兰斯泰訥"方法（Landsteiner， science 73: 405 ( 1931 ))的普通方法与Ashby (J. Exp. Med. 29:267(1919))和 Coombs (Brit. J. Exp. Pathol. 26:255(19站)）的方法的结合是将病人的红血细 胞加到含有血型抗体（如抗-A或抗-B)的标准实验试管中，混合后使得发生抗 体/抗原结合反应，然后离心。如果所领啶的抗原存在，将发生抗体/抗原的结 合并导致病人红血细胞的凝集。用手摇动试管来移开"结块"的细胞离心后在 试管底部产生的块结。然后进行主观判断，看移开的细胞是否是"结块的"， 并且看"结块"的程度。

20世纪中叶，进行了许多努力来简化所述技术以减小试验的主观性和降 低错误率。人们认识到某种程度上，相容性试验结果的持久性记录可通过利用 可'湿性的，即非吸收性的或有些情况下可吸收性的、至少一部分表面积上载有 必需的免疫学试剂的试验载玻片或试验板来获得。在这方面，专利号为 2770572、 2850430、 3074853、 3272319、 3424558、 3502437和3666421的美国 专利以及欧洲专利申请#010488卜~描述了这种试验板和相关仪器的选择实 例。在微板上进行血型鉴定的优点包括可简单操作大量的样品，通过仪器和计

^m的内部处理进行结果的搜集和处理，来对凝集反应进行客观的测定。 一些

带有计算机控制的自动仪器和高通过量的分光光度计读取器的昂贵的和专用的 系统被引进到血库的自动操作系统中（Chung，等.，Transfusion 33:384(1992))。

商品化的血型测定试剂盒中引进了在填充了凝胶形试剂的特殊微试管中进行红细胞抗原与抗体反应的改进检测方法。（Lapierre,等.，Transfusion30:109(1990))。为了克服以血细胞凝集反应作为血型测定终点的方法中存在的问题而使用固相技术己由Scott论述过了 （Transfusion Med.Rev. 5:60(1991))。最近，Growe等(Transfusion Med. Rev. 10:44(1996))报导了 RBC抗原自动驶趣的完成和应用和不但适用于血液中心而且也适用于医院输血实验室的血清抗体的筛选方法。至少七种不同的具有特定测型试剂的孔被用于这些方法来测定样品的血型。用于大规模血型的测定和单^H式管/孔中只有一种抗原或抗体型的测定的所有方法主要是应用了基于凝集反应的方法。专利号为4550017和4748129的美国专利中报导了iOT荧光标记试剂进行的分离辨别反应已被用于血型的鉴别。

目前的方法是利用红细胞的凝集反应作为终点。如上所述，这一反应是在试管中、载玻片表面上、微板中和柱凝集反应试验中完成的。后面的两种方法可手工«过自动仪器完成。所有的方法都需要从细胞中分离血清（或血浆）皿行正向和反向型测定。

因此，建立一种在单一i式验中进行正向和反向型测定的方法是有意义的，而更好地是，在i式验以前不需要分离血液样品。这种方法将使得一名血库技术人员同时观啶红细胞上的血型抗原和血清中具有临床意义的抗体成为可能。这种方法将大大M^所进行的个体试验数目，即每年减少了在血液中心进行的大约5千万至1亿次逸验，明显地节省了时间和费用。我们建立了能够区别样品红细胞（RBC)和试剂RBC的技术，因此它们的凝集反应是截然不同的。另外，本文公开的新方法《顿了标记的观趣抗体试剂来识别它们的反应和样品中预先形成的抗体。本发明的试验不需要分离血液样品就能完成，因此可采用全血(WB)来完成。本文公开的试验可在自动仪器上使用，所得的进一步的优点是不需要从血清中分离细胞。而且，正向和反向试验的同时检测减少了分型和定型（正向和反向试验）所需的试验次数。

在本发明的荧光标记的技术方案中的正向试验中，单克隆抗体被标记。而反向试验中，试剂红细胞被标记。更加优越的是能够i,E捌（目测或通过自动读取器）混合的红细胞群。例如，反向试验可以在1次试验中进行而不需要2次试验，导致试验次数的减少。进一步应用抗体筛选，其中采用2个细胞在一个孔中一起试验来代替2次单独试验，减少了试验的次数。对视觉系统的细胞染色被应用到现有的血型试验平板中，其中采用了试

管、微板、载玻片和柱凝集技术（CAT),以及试验平板如Vitros™250、 750或950 (Qrtho-Clinical Diagnostics, Inc. ， Rochester, NY)玻片方法，

Vyas ，专利号为5776711的美国专利中公开了一种"同步"ABO和RH(D)血液测型或抗体筛选方法。然而，为了减少测定ABO血型的试-验次数而进行了类似的尝试后，本发明同时进行了样品红细胞ABO的测型和对应于A和/或B抗原的抗体存在的测定。另外，本发明使用的是全血而不是分离的血清和红细胞组分。本发明中标记的试剂红细胞的使用也不同于Vyas等的合成珠子的使用。

ABO血型的同步分析可采用合适的荧光色素来标记试剂红血细胞并选择出标记了荧光色素的合适单克隆抗体。细胞和凝集物可在显微镜载玻片或类似的物体iM过激光扫描血细胞计数器进行测定。载玻片上的细胞被扫描激光光源

照射。通常，所使用的激光光源包括蓝色氩离子激光和/或红色氦-氖激光。荧

光和光散射可通过使用激光扫描血细胞计数器（Compucyte， Cambridge, MA)来进行测定。

正向和反向试验的同步测定中激光扫描血细胞计数器的使用如下所述。当一个细胞或细胞簇（凝集物）被激光束扫描时照射光被细胞或细M散射并且»1"的强度与细胞（或)«物）的大小和皿有关。例如，单个红细胞比小

7聽物to的光少，而小》,物比大;線物娜的光少。

而且，当一个细胞或细胞簇（凝集物）被激光束扫描时，照射光可使和细胞结合的荧光色素发出荧光。如果每个细胞的荧光色素较均匀地与试剂红细胞结合，荧光强度则与凝集物的大小有关。例如，单个红细胞发出的荧光比小)聽物少，而小?驗物发出的荧光比大凝集物少。

在鉴别不同类型的凝聚物方面，f(i寸光和荧光的结合使用比单使用其中的任何一种光更可靠。

除了这两种参量外，结合了荧光素的单克隆抗体也可被用于标记需要测定的细胞（和凝集物)。通过照射激光束照射细胞而发射出的荧光给出关于这些单克隆抗体与细胞或?tt物结合的其它信息来区分细胞或凝集物的亚群。

AB0同步测定的五个参量的（正向散射，侧向目，和三个荧:)Wt)点图分析如图1A-D所示。本技术领域的技术人员可以看出流式细胞仪或荧光显微镜也能用来进行

ABO血型的同步分析。

在流式细胞仪中，要测定的细胞和凝集物被引入快速移动的液流中心并成单行匀速流出小孔。通过周围的、^M作用，颗粒以流体动力学的形式被集中到液流的中心。液流中的细胞M领糧站，在此细胞被光源照Jt并且须懂是以

每併巾2. 5X102到106个细胞的速度进行。激光源被用于细胞的测量； 一般使用的激光源包括氩离子激光（UV，蓝和绿光)、氪激光（黄和红光)、氦-镉激光

(UV和蓝光)、和氦-氖激光（红光)。荧光和光M3"能通过使用流式细胞仪，例如 ，CytoronAbsolute™ 流式细胞仪 （Ortho-ClinicalDiagnostic, Inc., Raritan, NJ)来观!l定。

在荧光显微镜中，细胞和凝集物是在显微镜载玻片或类似物体上计数测量的。细鹏常以白光源或基本上单色光源进行照谢。在此，激光源也可鹏作单色光源。凝集物的存在可以采用白皿行分析，有关的荧光分析采用单色光和，的滤光片。目测或自动读取可用于这些读取中的一种或两种。

目测技术可被用于本文的正向和反向血型测定中。使用柱凝集试验（CAT)的这种方法可采用一个 BioVue™盒 （Ortho-ClinicalDiagnostics, Inc., Rochester, NY)。这种盒包括加入了微粒基质的柱子。这种基质上覆盖了分散在缓冲液中的誠血液测型抗体，形成了初始反应带。

CAT可采用自动读取器系统来翻译;,结果。实施CAT的ortho AutoVue™(Ortho-Clinical Diagnostic, Inc. ， Rochester, NY)全自动化系统中有一个这种读取器。自动渎取器是一个由CCD (充电的耦合装置）单色视频照相机、和图像处理板、和一个IBM-兼容PC组成的计算机控制图像系统。读取器首先需要一个数字化的反应图像并鹏图像处理软件进行处理来获得反应的特性，然后这些特性被用于反应分类禾辨。这些特性被用来将反应分成负和正两类，并转化成七种常规反应类型或级别中的一种。鉴定分析， 一种线性统计模式鉴别工具，是用来区别负和弱反应的。

然而CAT中使用的另一种读取器是BioVue™读取器2 (Ortho~ClinicalDiagnostics, Inc., Rochester, NY)。这禾中读取器有一个用于十二个BioVue™盒的自动装载器和一个卤素灯源，并且图像分析特性允许在RBC波长基础上鉴定细胞，由此转化成?驗反应结果。通过CCD照相机和数字板获得图像。

7本发明提供了一种分析血液的方法'包括（a)使血液样品与抗-A和抗-B的抗体反应，其中抗体结合了检测标记；（b)使血液样品与带有标记了的A抗原和标记了的B抗原的试剂纟Bfc邻胞反应；（C)将样品进行血细胞计数分析；和（c)分析血细胞计数的分析结果来确定ABO血型。血液样品可以是全血并且上述步骤（a)和（b)中使用的血液样品可以是相同的未分离样品，或可以是来源于同一病人的样品的不同部分。与抗体结合的检测标记物可以是荧光标记物如FITC、 B0DIPY、 «蛋白（包括藻红蛋白）、藻胆蛋白的能量转化偶联物、多甲藻素叶绿酸蛋白、Cascade Blue、 AMCA、活性吲哚羰花青、TRITC、别織蛋白（APC)、藻青素（PC)、和吲哚二羰花青(Cy5w)。相反，标记了的A抗原和标记了的B抗原可以是选自FITC、 BODIPY、藻胆蛋白（包括藻红蛋白)、藻胆蛋白的能量转化偶联物、多甲藻素叶绿酸蛋白、Cascade Blue、 AMCA、活性喷哚羰花青、TRITC、别藻蓝蛋白（APC)、藻青素（PC)、和吲哚羰花青(Cy,，）组成的一组荧光染料。

本发明还提供了血液分析试剂盒，该盒包括（a)第一枯有标记了的抗

-A、和抗-B的抗体的容器；和（b)第二^t有标记了的试剂红血细胞的容器，

其中该标记了的试剂红血细胞带有标记了的血型A抗原和标记了的血型B抗原。抗-A抗体可含有IgM-FITC,并且抗-B抗体可含有IgM-FITC。试剂红血细胞是血型A1、 A2、.B和/或0，并且可以用选自于下列荧光染料组的染料进行荧光标记，该染料组由活性染料（例如荧光素异硫氰酸酉旨（FITC))、亲脂性染料

(例如步花青540或DilQ(3)-DS)、活性亲脂性染料、与膜结构反应的染料、和结合了荧光染料的单克隆抗体组成，这些单克隆抗体与红细胞上的共同结构反应（例如抗-血型糖蛋白-PE偶鹏)。«地，荧光染料是DiKls(3)-DS。试剂盒可另外含有一个裕»技术（CAT)盒如BioVu^!盒。

本发明用于同步进行正向和反向ABO测型的方法，包括（a)血液样品与抗-A和抗-B抗体反应，其中抗体结合了检测标记；（b)血液样品与带有标记的A抗原和标记的B抗原的试剂红血细胞反应；（c)样品进行血细胞计数或荧光显微分析；和（d)分析血细胞计数或荧光显微分析的结果来确定ABO类型。进一步用来分析血液的方法包括（a)血液样品与抗-A和抗-B抗体反应；（b)血液样品与带有A抗原的试剂红血细胞和带有B抗原的试剂红血细胞反应；

(c)样品进行目测分析；和（d)分析目测分析的结果来确定ABO类型。（b)步骤中的试剂红血细胞可以被染色。所述方法可通过彬驗技术棘行并且结

果可通过自动读取器如Ortho AutoVtu^系统自动读取器或Ortho BioVue™读取器2而自动读取。

图1是同步正向和反向ABO血型测型的四色激光扫描血细胞计数分析的图示说明。

图1A表示抗-B FITC和A标记的RBC与A型全血的正向（X-轴）和侧向(Y-轴）散射（分别是绿色的最大象素和桔黄色的最大象素)。在凝集物区域中的侧向散射图中没有测到结果。而且，在绿色相对于桔黄色的图中，从侧向翻寸中也没有得到进行进一步分析的结果。

图IB表示抗-B FITC和A标记的RBC与B型全血的正向（X-轴）和侧向

(Y-轴）散射（分别是绿色的最大象素和桔黄色的最大象素)。在凝集物区域中的侧向散射图中测到了结果。当在绿色相对于桔黄色的图中进一步分析了这些结果后，劍门确定存在试剂细胞（桔黄色阳性）的;聽物，也存在逸验rbcs

(绿色阳性）的'«物。还测到了一些具有混合荧光（混合的绿色和桔黄色）的凝集物。

图1C表示抗-B FITC和A标记的RCB与AB型全血的正向（X-轴）和侧向(Y-轴）散射（分别是绿色的最大象素和桔黄色的最大象素)。在凝集物区域中的侧向翻寸图中测到了结果。当在绿色相对于桔黄色的图中进一步分析了这

些结果后，我们没有发现试剂细胞（桔黄色阳性）的;»物，但确定存在试验

rbcs (绿色阳性）的凝集物。还测到了一些具有混合荧光（混合的绿色和桔黄色）的凝集物。

图ID表示抗-B FITC和A标记的RCB与0型全血的正向（X-轴）和侧向(Y-轴）散射（分别是绿色的最大象素和桔黄色的最大象素)。在凝集物区域中的侧向t^图中测到了结果。当在绿色相对于桔黄色的图中进一步分析了这些结果后，劍门发现了试剂细胞（桔黄色阳性〉的凝集物，但没有发现试验rbcs(绿色阳性）的;«物。

图2是同步正向和反向测型试验的预观U结果示意图。图2A表示标记了的A型试剂RBCs和标记抗-B与A型全血的混合没有产生凝集反应。

图2B是标记了的A型试剂RBCs和标记抗-B与B型全血的混合产生了 BRBCs与抗-B (绿色）和抗-A-A型试剂细胞（桔黄色）的凝集物的示意图。图2C是标记了的A型试剂RBCs和标记抗-B与AB型全血的混合产生了 AB RBC-抗-B (绿色）的凝集物的示意图。

图2D是标记了的A型试剂RBCs和标记抗-B与0型全血的混合产生了抗-A-A试剂细胞（桔黄色）的l^物的示意图。

图3是绿色M^物、桔黄色凝集物和混合的桔黄fe/绿色凝集物的示意图， 其中每一种?«物将在绿色相对于桔黄色的最大象素图谱上呈现不同的散射。

图4是桔黄色凝«、绿色凝集物、和混合的桔黄fe/绿色l^物在绿色 相对于桔黄色最大象素图谱上的相对位置的示意图。

图5是桔黄色凝集物、绿色凝集物、和混合的桔黄fe/绿色;i^物在绿色 相对于桔黄色最大象素散射图谱上的相对位置（密度）的示意图。

图6是CAT系统中B血清反向试验目观啲示意图。标记了的试剂A和B 细胞与B血清混合，产生了褐色?»物，离心后，发现该凝集物在CAT系统中 的凝胶柱的顶部；未反应的标记试剂B细胞则被发现在柱的底部。

根据本发明，同步正向和反向ABO血型检测以不同的技术方，行了描 迷。本发明可与柱凝聚试验（CAT )反应和以Ortho-Clinical Diagnostics, Inc. ， Rochester, New York盒的形式生产和销售的、商标为 BIOVUE™的分离管一起使用。结果可以采用计算机化的图像系统AutoVue™自 动读取器，或BioVue^读取器2来测定，两种系统如上所述。

本文公开的进行试验的其它方法是采用了试管、微板、载玻片和试验平 板如Vitros™ ^及片方法。结果也可采用流式细胞仪如，CytoronAbsolute™或

激光扫描iMffl胞计数器或上述列举的方法来测定。

一般用于反向测型试验的试剂RBCs在其表面上具有Ar A2、 B或没有ABO 抗原（Ai型、^型、B型、0型)。这些细胞用于检测引起试剂RBCs的;驗反 应的反应抗体。在正向型试验中，单克隆抗-A和抗-B被用来检测在样品红细 胞表面上的它们各自对应的抗原存在。

本发明也教导了同步测定其它血型抗原的存在，包括，例如，D、 C、 E、 c、 e、 M、 N、 S、 s、 PP Lea、 Leb、 K、 k、 Jsa、 Fya、 Fyb、 Jka、 Jkb、 Lua、和LW、 和其它多种血型抗原。本发明的方法f腿行正向或反向型血型试验的荧光或视 觉检测，在一个^J选的技术方案中，能同步进行正向和反向血型试-验。在荧光检测的技术方案中，试剂RBCs、单克隆抗-A (从小鼠单克隆IgM 纯化的）或抗-B抗体（也是从小鼠单克隆IgVI纯化的)、^^f有三种，被荧光 染料标记，（1)试剂肪Cs与循环抗体的凝集物；和（2)单克隆抗-A或抗-B 抗体与RBC表面抗原的?,物可M使用488咖的激光，例如使用计^t/liffl 胞激光扫描血细胞计数器进行检测。或者，抗血清不需进行荧光fH己，但可利 用光散射进行检测。结果可进一步通过激光流式细胞仪，例如使用Ortho CytoronAbsolute™流式细胞ME行检测。也可以使用荧光显'微镜。

对于同步正向和反向型试验,在有A型全血的情况下，试验过程中使用了 标记了的B型试剂RBCs和FITC禾gi己了的抗-A。见图1A和2A。见例1。 FITC-标记的抗-A能敏»全血样品中的A型红细胞而产生绿色的;,物。全血的血 浆中的抗-B會,凝集桔黄色的标记的试剂B型RBCs，而产生桔黄色的凝集物。 采用B、 AB和0型全血也可进行类似的i式验。见图IB-D和2B-D。

基于绿色和/或桔黄色凝集物的出现，可观察到与四种主要AB0血型的每 —种相关的四种不同的反应模式。见表1。因此，在一种试验中，AB0血型通 过同步的正向和反向测型试验进行测定。相反，在有A、 B、 AB或0型全血存 在的瞎况下，标记了的Ai型试剂RBCs和FITC标记了的抗-B混合在一起。再 次观察到了基于出现的绿色和/或桔黄色凝集物的四种不同的凝集反应模式， 每一种模式对应于一种特定的AB0血型。因此为了测定和确定ABO血型需要进 行两种试验。见表1。 一些具有混合荧光的;«物（混合的绿色和桔黄色）被 测定出来。见图3-5。这些)»物产自于未*斜己细胞的凝集物上或附近的标记 的细胞的俘获/邻近或产生于标记的细胞的凝集物上或附近的标记抗体的俘获 或邻近。混合的绿色/桔黄色凝集物的存在并不干扰结果的阐明。采用试验2 产生的对应于每一种AB0血型的数据表如表1所示。表l

测定和确定ABO血型的反应模式

微l 微2

全血样品 FITC抗-A 桔黄色 FITC抗-B 桔黄色

， 试剂B细胞 试剂^细胞

(绿色 （桔黄色 （绿色 （桔黄色

纖物） 纖物） 纖物)

A + + 0 0

B 0 0 + +

AB + 0 + 0

0 0 + 0 +

表1中的结果是由计算机细胞激光扫描血细胞计数器测出的。然而，也 设计了其它检测凝集物的方法，这些方法可以有标记的抗血清也可以没有标记 的抗血清，包括但并不限于上述讨论的方法。尽管本文所述的各种试验可斜虫 进行，或任意组^iS行，但本发明«的方法是同步进行正向和反向试验。

荧光染料用来标记试剂细胞（用于反向测定）和单克隆抗-A和抗-B的抗 体（用于正向检测)。用于标记试剂细胞的优选的荧光标记包括1， l'-二十八烷 13,3,3，,3，-四甲基吲哚羰花青-5,5，-二磺酸（DilC】8(3)DS〉。当用488 nni的 ，激光激发时这种染料使得细胞发出桔黄色荧光。用于这一技术方案的其它 荧光标记物包括活性染料（例如荧光素异硫氰酸酯（FITC))、亲脂性染料（例 如步花青540)、活性亲脂性染料（Dil的氯甲基苯甲酰氨基和甲基苯甲酰氨基 的衍生物、Dil的磺化衍生物和DiO的磺化衍生物)，与膜结构发生作用的染料， 和结合了荧光染料的单克隆抗体，这些单克隆抗体与红细胞上的共同结构具有 反应活性（例如抗-血型糖蛋白-PE偶联物)。

标记单克隆抗体优选的荧光标记物包括荧光素异硫氰酸酯（FITC)。当用 488 nm的兰氩激光激发时，FITC标记物使得结合了这种抗体的任何细胞发出 绿色荧光。FITC属于蛋白-活性的、可用488 ntn的兰氩激光激发的低分子量 荧光染料中的一员，其中任何一种这种染料可用于本发明单克隆抗体的标记。 这类染料的另一个例子是BODIPY，（分子探针，Eugene, OR)，当用这种激光激发时，其也能发出绿色荧光。其它潜在的有用荧光色素包括藻胆蛋白（例如.，

藻红素（PE)、藻胆蛋白的能量转化偶联物（例如.，DuoChrom^(Becton Dickinson, San Jose, CA)、CY5™(0rtho-Clinical Diagnostic, Inc., Raritan，NJ) 和其它）、和多甲藻素叶绿素蛋白（PerCP™(Becton Dickinson, San Jose, CA))。 前面的染料都采用488 nm的兰氩激光激发，但其它激发波长光源和发光染料 的结合也是可行的。一徵仔包括：采用紫外光激发的Cascade蓝和7-氨蒼 4-甲基香豆素-3-乙酸（AMCA);采用绿光激发的藻红素、活性吲哚羰花青

(Cy3™)、和四甲基若丹明异硫氰酸酯（TRITC);采用红光激发的别藻蓝蛋白

(APC)、藻青素（PC)、和n引哚二羰花青(Cy5"。

作为所述荧光检测系统的替换，不需要用荧光l示记物（FITC)标记抗血

清。凝集物的检测可以通过将光散射设置lBi^f这种大小和类型粒子的位置

i^S行测定，如本技术领域的技术人员所知的。 反向*验割牛

为了优化凝集反应的结果，首先要确定标记试剂RBC和标记单克隆抗体 与全血的有效比例。因此«^的结果被最大化并且不采用过量标记。确定 合适的试验比例而斷氐了假阴性的概率，所以特异性得到了舰。

RBCs的标记

对于使用DiIC18(3)-DS标记试剂RBC的反向i式验，试剂RBCs相对于全血 的理想比例是根据试剂RBCs的这种比例特异«全血中的相应抗体的能力来 确定的。尤其是，标记A"式剂RBCs被以不同的比例与B型全血混合。以5%、 10%和40%的试剂RBC悬浮液进行i式验来确定有效的试剂RBC浓度。采用了 2&\1 的DiI-DS的溶液。MilCytoronAbsolut^流式细胞仪分析标记的RBCs，并且 测了平均荧光值。大约5。/。到大约lO。/。的RBC浓度是有效的，最«地是大约5% 的RBC悬浮液，这是由于fOT较低浓度的服Cs，平均荧光值较亮。然而，可以 4OT能够提供充分可测荧光或高于背景的可测荧光物质数量的试剂RBCs的浓 度，并且从实用的角度出发，浓度可高到不被禁止的浓度，例如试剂的体积。 表2表示在所用Dil-DS的浓度下，MiW不同比例的试剂RBCs进行i&验所获 得的平均荧光值。表2

平均荧光值

阴性 28 对照

5% RBCs 75

10% RBCs 83

40% RBCs 45

DiI-DS的浓度范围

在本发明的反向型试验中，为了确定有效的Di1-DS浓度范围，在5免的RBC 悬浮液中测试了五禾中不同的Dil-DS的终浓度。{顿CytoronAbsolute】对这些 细mS行了分析。观懂了平均荧光值和％CV (变化系数)。从5»尔到40微 摩尔的DiI-DS浓度i微结果为阳性，或在这一技术方案中，采用低于20%的百 分CV能产生足够亮度信号的任何浓度都是可行的。由于釆用最小的CV产生最 亮的信号，所以四十t^尔的溶液是雌的。见表3

表3

平均荧光值 %CV

40jxM 186 7

20^M 169 10

IO;jM 138 17

5pM 119 20

2jjM 65 35

阴性对照 28 52

反向测型-Di I标记的RBCs和全血（WB)

下一步是确定反应条件，其中桔黄色的标记A型试剂rbcs在B型或0型 全血中凝集，但在A型或AB型全血中不凝集。相反地，也确定出了标记B型 试剂RBCs与A型或O型全血形成桔黄色的凝集物，但与B型或AB型全血不形 成?»物。有色凝集物是通过在计算tMQ胞激光扫描血细胞计数器上在488咖 的蓝氩激光下的最大象素图谱上的桔黄色和绿色信号的相对位置进行测量的。

全血相对于标记的RBCs的比例是M制备不同的混合物并采用标准的血 库血清学技术进行现啶的。结果既可采用肉眼测视也可采用显微测视。5%的悬浮液可用于全血i微。可观察至IJ;驗反应;然而，劍门发现RBCs混合物中的RBCs

的浓度不足以给出稳定的;驗反应结果。见表4。 表4

5% A型Di I-DS 全血^f只 A型全血* 0型全血

25^L 5^L 阴性 阳性

25pL 25jiL 阴性 阳性

40pL 阴性 阳性

*阴性对照

5%标记的RBC悬浮液被浓缩到40%并将其中的5joL加到5^L的全血中。结 菊艮好，观察到了?驗反应，因此没有再进行其它比例的试验。 正向测型谅验-FITC标记的抗体和全血

同样地，对于使用标记的单克隆抗体的正向测型试验，基于标记的抗体 靴匕例特异搬體全血中对应的细胞抗原的能力，首先需要测定标记的抗体相 对于全血的^S比例。尤其是，用A型全血滴定FITC标记的抗-A来确定反应 条件，该，条件是：在A型或AB型的全血中形成绿色?l^而在B型或0 型全血中不形成ll^物。另外，再确定标记的抗-b与b型或ab型全血形成绿

包»物而不与a型或o型全血形成;M物的反应条件。有色li^物ii3i在计

算ma胞激光扫描血细胞计数器上在488 nm的蓝氩激光下的最大象素图谱上 的桔黄色和纟tfe信号的相对位置进行测量。

下一步确定的是荧光标记物相对于抗体的比例。标记的抗体部分是以3 种不同的稀释度、以5(H的体积与全血进行试验。见表5。

表5

全血：体积s/型 FITC抗-A:体积s/ Dil 反应级别

IOjiL的A型 50joL的1: 10 2+**

lO[i的A型 50jiL的h 100 1 +

10)iL的(^型 50liL的l: 10 阴性

10jX的(^型 5(^L的l: 100 阴性

5jiL的A型 5C)^iL的l: 50 3+

5jiL的A型 50jiL的1: 100 2+

如AABB技术手册所定义的级别系统，第12版；607页。采用LSC， A型1: 100的稀释度给出了最好的结果，因此被选出作进一

步的试验。基于这些结果，50mL的FITC :抗体以1 : IOO的稀释度和5mL的 Dil-DS标记的RBCs作进一步的逸验。然而，所《糊的标记物：抗体的范围可 以是能在背景（在低端）和前区（在顶端）上产生可测荧光的樹可浓度。 目测系统

改变红细胞颜色的能力使得能够通过目测或分光光度测定法（通过吸收 或g)同时检测2个细胞群，艮卩，不需要检测荧光。例如，受氰化物驢氮 化物的作用，红细胞由亮红色转化为褐色。然后从褐色凝集物可以目测出红色 7«物。虽然本技术方案中改变红细胞血红蛋白固有的颜色也是可行的，但简 单地将有色基附着到或结合到红细胞上脅,检测到其光谱特性的变化。

在目测技术方案中，通过柱凝集方法（CAT)，行正向和反向试验，例 如，M采用BioVue™盒。禾调柱凝集i微装置，如本文描述的il^顿填加 了本发明的基质的圆柱形装置«行正向血型测型分析。含有抗血清的单克隆 抗体或多克隆抗体被分散在生理学上相容的缓冲液中，然后加到微粒基质中来 浸湿这些微粒基质，并从基质向进口扩展以形成初始反应带。这种抗体的合适 用量可由本技术领域的技术人员根据抗体的抗原亲和性和特异性、按常规方法 进行优化。抗体被分散到缓冲液中，该缓冲液中也可含有本领域已知的合适添 加剂，诸如高分子量的聚，等，来增强它们的活性和避免非特异性结合。

这些实例包括聚乙烯、蔔聚糖、明胶、和聚乙二醇。也可加入低分子量 聚，来增加溶液的浓度。

在这一实例中，如果加入相对B型血细胞的抗体，病人样品中的B型血 细胞将与抗体结合，在基质顶部附近形成捕获的M细胞层。在这个实例中， /V型细胞不凝集并被离心到装置的底部。通常，病人细胞中可能含有弱反应的 突变体。遍布在柱基质中的较小的f谢凑镍物表示中等fiS的反应，而阴性反 应是在基质柱的底部形成扣状体。图6表示采用柱凝集反应方法的反向试验， 其中试剂A和B细胞分别被标记。按照产品说明将样品血清输送到柱的顶部， 然后按照所述方法温育柱管并离心。试剂A型细胞与存在的抗A抗体发生》«， 而试剂B细胞则流到柱底，表明样品血清是B型。

试齐!j RBC ( Affinngen@ AL和B型细胞，OrthcK:iinical Diagnostics, Raritan， NJ)用0. 2%终浓度的叠氮钠（NaN3)进行处理。NaN3减少血红蛋白中的铁离子，导致颜色由普通的红色变为深褐色或栗色。源于同一

份Af f irragen的未经处理的细胞TO作对照。未处理的对照和处理的试验细胞 分别与BioVue™反向盒中的B型血清按照产品说明（10^13-5%的红细胞和40|jL 血清；然后按照厂家说明在BioVue离心机中离心5分钟）进行实验。B血清将 ^縫Ai细胞但不?MB细胞。除了未处理细胞是红色、处理过的细胞是褐色， 没发5»处理的与处理的细胞的凝集物之间有其它的不同。参见本文中的实施 例2和表6。

通过所述目测系统对凝集反应结果进行的自动测定可利用本文描述的两 种系统AutoVu^1自动读取器计算机化图像系统或BioVu^读取器2来完成。

如本文所公开的，如果需要肉眼观察凝集物，优选的是先采用适合于实 现目测凝集反应的染料对附着在细胞上的任何无色细胞或无MP雄行染色。 红血细胞的血红蛋白能自然提供这种合适的颜色，所以不需要染色。直接凝集 反应实验可禾,战ABO会IlL细鹏完成，还可利用含有D、 C、 E、 c、 e、 M、 N、 S、 s、 PP Lea、 Leb、 K、 k、 Jsa、 Fy\ Fyb、 Jka、 Jkb、 Lua、和bjb抗原等的 氛细胞。类似地，当血清用来检测对应于特殊抗原或含有抗原的细胞的抗体的 絲时，它们可与已知抗原JS行混合。如果未知血清含有对应于所提供的已知 抗原的抗体时，当它们从基质中流动或流下时，将产生凝集ra物并被截留下

来。而阴'ttt清将不发生反应，也没有;M物被截留下来。

在血液血清学一文中详尽地阐明了本发明的方法的应用。然而，应当理 解的是在本发明可行性范围内进行的同步正向和反向测型结合分析包括任何与 粒子结合的结合配体，这种粒子在正向和反向试验中，由于配体与其结合底物

结合的结果而进行g。例如，通常采用从样品RBC，s中分离出的血浆或血清 进行的"抗体筛选试验"育雜采用全血与本文公开的标记试剂红细胞，行。 另外，血清或血桨也可被使用，但通过混合1未标记试剂红细胞和1标记试剂 红细胞使得抗体筛选或抗体鉴定戶万需进行的试验次数减少了 50%。尽管红细胞 正向和反向测型系统已被进行了说明，但本技术领域的技术人员将会翻?其它 系统也能以这种方式进行优化。

下列实施例只是用来说明但不是对本发明保护范围的限制。

实施例1

荧光检测技术方案组A-试剂制备

ilil往Dil-DS的lmg小瓶中加入lraL的乙醇(Sigm4 St Louis MO),并

充分混合来制备亲脂性的、荧光膜标记物、1， r-二十八烷基-3， 3， 3', 3'-四甲

基吲哚羰花青-5， 5，-二磺酸（Dil-DS) (Molecular Probes Inc., Eugene, OR) 的储存溶液，浓度为lmg/mL。该储存溶液可在室温下避光保存多达6个月。

MI-DS的实验溶液通过用Hanks平衡盐溶液（HBSS) (Sig隨)稀稱诸存溶 液到80(iM而制得。弃掉未fOT的实验溶液。

组B-红血细胞（RBC)的荧光标记

采用Vacutainer腺嘌呤柠檬酸盐葡萄糖（ACD)保存试管（Becton-Dickinson, Franklin Lakes, NJ)从血型是&、 B和0的捐献者身上收集全血。 RBCs在大约3000 X g下离心分离5射巾并在3到5mL的磷M&缓冲盐水（PBS) (Gibco)中洗涤两次，并且每次洗涤后，在大约3000 X g下离心分离3到5 射中。以HBSS作为稀释液来制备A型^的RBC悬浮液。

等体积（0. 1到5mL)的5%的RBC悬浮液和Dil-DS实验溶液在一支试管 中进行混合并在37"下温育30 ^H中，避光保存。每十分钟雜一次试管。标 记的RBCs用3到5 mL的PBS洗涤三次，在大约3000 X g下离心分离5 5H中 并重i?^浮在HBSS中成为5%的溶液。

通i^装有免疫计数II™软件的CytoronAbsolute™流式细胞仪（0rtho-C丄inical Diagnostics, Inc. ， Raritan， NJ)确定桔黄色荧光。

基于光TO参数，对RBCs进行了门控，并且观懂到了与门控的RBC结合 的荧光。并且在背景上的荧光的测量结果表明标记充分。用等体积的PBS (0. 1 到5mL)代替荧光标记物温育相同的RBCs作为阴'〖«照同时进行试验。

组C-荧光素异硫氰酸酯（FITC)标记抗体

小鼠单克隆抗-A、克隆MH04、和小鼠单克隆抗-B、克隆NB10.5A5是以组 织培养形式从Ortho-Clinical Diagnostics, Inc.生产装置中获得的。单克隆

抗体被部分纯化并用标准方法进行了配缩。

用PH值为9. 5的碳II&缓冲液透析纯化了的抗-A和抗-B，并按照标准方 法用FITC进行标记。采用尺寸排阻层析将FITC标记的抗体从没有被FITC标 记的抗体中分离出来。在280咖和492nm下测定各部分的吸收值。每一部分的 F/P (荧光素/蛋白）摩尔比例采用下列公式计算：

18F=A495/0.15 P^[A28(KA495X0. 32)]/1.2 F/P比例二(F/P)X2. 39 具有最高的F/P比例的三个部分被用在本发明的荧光同步正向和反向试 验的技术方案中。

抗-A部分 F/P比例 抗-B部分 P/P比例

3 20 3 36

4 26 4 20

5 32 5 12

组D-全血（WB)中的同步正向/反向测型试验和试验阐明-激光扫描血细 胞计数器（LSC)

我们制备了以抗-B FITC标记的抗懒释的Di1-DS A型标记RBCs。用0.5mL 含有2%的小牛血清白蛋白和1%叠氮钠的PBS将抗，释到1 : 100。九个^f只 的稀释抗体与一个体积的标记细胞相混合。在下列亚组1至4中，55^L的标 记细腺抗体混合物被加到5^L的全血中。用Clay-Adams (Parsippany，NJ)血 清离心机以大约3500rpm的繊将试管离心15秒钟。RBCs被轻體ffS浮起 来。舰将3^L的反应混雄加到7ML的PBS中，来制备载玻片，然后盖擅 玻片。

采用LSC (Compucyte， Cambridge, MA)对载玻片进行分析。 亚组-1

采用本文组-D的材料和方法，对A型全血进行实验。由于A型全血不含 对应于A红细胞的抗体，所以与标记的试剂红细胞不形成凝集物。另外，由于 A型全血细胞不带有B抗原，所以与抗-B FITC不形成凝集物。图1A表示抗-B FITC 和A型标记的RBCs与A型全血的正向（X-轴）和侧向（Y-轴）散射（分别是 绿色最大象素和桔黄色最大象素)。如戶万示，在凝集物区域的侧向散射图中没 有检测到什么结果。而且，从侧向散射图中没有得到用来在绿色相对于桔黄色 的图上作进一步分析的结果。

亚组-2

采用本文组-D的材料和方法，对B型全血接着进行实验。由于B型全血 含对应于A型红细胞的抗体，所以能与标记的试剂红细胞形成;體物。另外，由于B型全血细胞表达B抗原，所以与抗-B FITC形成?^tl。图1B表示抗-B FITC和A型标记的RBCs与B型全血的正向（X-轴）和侧向（Y-轴）散射（分 别是绿色最大象素和桔黄色最大象素)。凝集物区域的侧向散射图中检测到了 结果。如所示，当在绿色相对于桔黄色的图上进一步分析这些结果时，我们确 认既产生了试齐蜘胞的1» (桔黄色阳性)，也产生了逸验RBCs的凑镍物（绿 色阳性)。 亚组-3

采用本文组-D的材料和方法，对AB型全血接着迸行实验。由于AB型全 血不含对应于A红细胞的抗体，所以与标记的试剂红细胞不形成凝集物。然而， 由于AB型全鹏胞表达B抗原，所以与抗-B FITC形成凝集物。图IC表示抗-B FITC和A型标记的RBCs与AB型全血的正向（X-轴）和侧向（Y-轴）

(分别是绿色最大象素和桔黄色最大象素)。凝集物区域的侧向散射图中检测 到了结果。如所示，当在绿色相对于桔黄色的图上进一步分析这些结果时，我 们没有观察到试剂细胞的;難物（桔黄色阳性)，但确认存在试验RBCs的?麟 物（绿色阳性)。

亚组-4

最后，采用本文组-D的材料和方法，对0型全JMit行实验。由于0型全 血含对应于A型红细胞的抗体，所以与IIH己的试剂红细胞形成凝集物。然而， 由于0型全血细胞不表达B抗原，所以与抗-B FITC不形成凝«。图iD表示 抗-B FITC和A型标记的RBCs与0型全血的正向（X-轴）和侧向（Y-轴）散 射（分别是绿色最大象素和桔黄色最大象素)。凝集物区域的侧向散射图中检 测到了结果。如所示，当在绿色相对于桔黄色的图上进一步分析这些结果时， 我们观察到了试剂细胞的凝集物（桔黄色阳性)，但没有观察到试验RBCs rbcs 的7tt物（绿色阳性)。

实施例2 .

目测技术方案

组A-有色红细胞的制备

Ajn B红细胞型的商品制剂（Affirtnagen®)是从Ortho《linical Diagnostics, Inc. (Raritan,NJ)购买的。从小瓶中取出At型RBCs的两个lmL 等伤H式样，并放入分开的试管中。其中一个等份的试样与2(H的10%的叠氮

20钠混合（Mallinckrodt, Paris, KY)。另一个等伤^#不进行处理并用作对照。 将每支试管盖好并在室温下温育16小时。经过夜处理后，叠氮钠处理的RBC 呈褐色，而未经处理的对照细胞im呆持红色。 组B-反向BioVue柱i^-双柱i&验

在标准BioVue™反向盒中采用--只柱中加入IOjliL的Al型细胞和40pL的 B型血清和另一只柱中加入IO^iL的B型细胞和40^L的B型血清(表6中的柱3 和柱4)对叠氮钠处理的细胞进行试验。对照细胞，未经处理的Al型和B型细 胞，分别在柱1和柱2中进行试验。按照生产厂家的说明书进行离心后，在珠 柱的顶部观察到了?験的A1细胞、未经处理的对照细胞（柱l)和处理的逸验 细胞（柱3)，这表明B型血清中存在着抗-A。在柱的底部观察到了未凝集的B 细胞、未经处理的对照细胞（柱2)和处理的试验细胞（柱4)，这表明没有抗 -B。未经处理的对照细胞呈红色而经处理的试-验细皿褐色。这些结果表明对

Al型和B型细Mia行处理并不降低创门在珠柱中的?驗能力。

组C-反向BioVue柱i&验-单柱it验

在实施例2的组B中，Al型和B型细胞分别在與虫的柱中进行试验来确 定样品的反向型。接下来，在一只柱中将10joL的未经处理的Al型细胞（红） 和10|iL的经处理的B型细胞（褐色）与40joL的B型血清进行混合。离心后， 观察到两种不同的细胞群。在珠柱的顶部观察到了凝集的（Al)细胞和在柱（表 6中的柱5)的底部观察到了未凝集的褐色（B)细胞。结果表明1个柱（1个 试验）可代替正常的2个战观啶正确的反向I&LM。另外，按照此组B对经处 理的10)iLAl型细胞和未经处理的10jiL B型细胞进行试验并且所得结果能检测 出凑據的褐色（Al)细胞和未;,的红（B)细胞（表6中的柱6)。

由组B和C得到的结果如表6所示。见图6。表6

2个不同的细胞群的目测和鉴别 BioVue反向柱标号

1 2 3 4 5 6

RBC(敏単） 气未舰 B未鹏 A【鹏 B舰 -~鹏+

B鹏 B未舰

离心后观穀啲SJS 4+ 0 4+ 0 3 - 4 + 3 — 4 +

混合的 混合的

微 雜 珠柱 珠柱 珠柱 珠柱 驗

顶部 底部 顶部 底部 顶部 顶部

的红 的红 的揭色 鹏色 的红 贓色

细胞 细胞 细胞 细胞 细鹏口 细胞和

底部 底部

的揭色 的红

细胞 细胞

柱中 柱中

没有 没有

细胞 细胞

糊 離

注释：所有的柱含有40pL的B血翻戶标的纟加胞。 Untr， ^g^JI^照湖胞 Tr， 崎&a^细胞

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