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具有抗癌活性的β-羟基保护的双癸基季铵盐及制备方法

阅读:1021发布:2020-08-20

专利汇可以提供具有抗癌活性的β-羟基保护的双癸基季铵盐及制备方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 涉及一类具有抗癌功能的大黄素衍 生物 的合成,更具体地涉及一种具有抗癌活性的β-羟基保护的双癸基季铵盐及其制备方法。所述双癸基季铵盐为甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲 氧 基-9,10-蒽醌基)甲基]铵盐,其制备方法是以大黄素为原料通过一系列合成反应制得。本发明的大黄素衍生物对肝癌HepG2、胃癌BGC、神经瘤SH-SY5Y、胃癌AGS、子 宫颈 癌 Hela等5种癌细胞和正常人胚 肺 成 纤维 细胞 HELF有不同程度的增殖抑制作用,可用于制备 治疗 癌症的药物。,下面是具有抗癌活性的β-羟基保护的双癸基季铵盐及制备方法专利的具体信息内容。

1.一种β-羟基保护的双癸基季铵盐,其特征在于:所述双癸基季铵盐为甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲基-9,10-蒽醌基)甲基]铵盐,结构式如式I所示, 代表阴离子,
I。
2.根据权利要求1所述的β-羟基保护的双癸基季铵盐,其特征在于:所述双癸基季铵盐为甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵, 表示-
Br。
3.一种如权利要求2所述的β-羟基保护的双癸基季铵盐的制备方法,其特征在于:
所述方法包括以下步骤:
(1) 大黄素与硫酸二甲酯在K2CO3存在下反应,生成1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌;
(2) 1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌与N-溴代丁二酰亚胺反应,生成
1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌;
(3) 1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌与氢溴酸反应,生成1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌;
(4) 1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌与N-甲基二癸基胺反应,合成甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵。
4.根据权利要求3所述的β-羟基保护的双癸基季铵盐的制备方法,其特征在于:具体步骤如下:
(1)1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌的合成:取1.6g大黄素溶解于120~
200ml丙中,加入10~12g无,加热至回流,在回流的状态下慢慢滴加4~8ml (CH3O)2SO2,回流20~24h,冷却至室温,浓缩,加入50~100ml水搅拌30min,抽滤,用丙酮洗涤,得到黄色粉末粗产品,胶柱层析分离得到1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌;
(2)1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌的合成:取0.8g 1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌,1.2~1.6g N-溴代丁二酰亚胺(NBS),0.2~0.3g 过氧化苯甲酰和60~
160ml的CCl4加入三口烧瓶中,加热回流15~25h,冷却至室温,过滤,滤渣分别用CCl4,H2O和丙酮洗涤,再用硅胶柱层析分离得到1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌;
(3)1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌的合成:100mL三口烧瓶中加入
280~800mg 1,3,8-三甲氧基-6溴甲基-蒽醌、30~50mL乙酸,加热至回流;在氮气保护下滴加5~9mL 47%(重量比)氢溴酸水溶液,继续回流反应4~6 h;反应物倒入
200~300mL 冰水中,搅拌后抽滤,滤渣烘干,用硅胶柱层析分离得到1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌;
(4)甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵的合成:100mL三口瓶中加入125~500mg1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌、
50~150mL氯仿和127~468 mg N-甲基二癸基胺;在氮气保护下回流反应,用TLC跟踪反应进程,20~24 h后反应结束;旋转蒸发除去溶剂,浓缩物用硅胶层析柱上先用氯仿再用体积比为4:1的氯仿-乙醇逐渐梯度洗脱,从最后的洗脱液中分离得到甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵。
5.根据权利要求4所述的β-羟基保护的双癸基季铵盐的制备方法,其特征在于:步骤(1)、(2)所述硅胶柱层析的洗脱液为二氯甲烷;步骤(3)所述硅胶柱层析的洗脱液为氯仿。
6.一种如权利要求1或2所述的β-羟基保护的双癸基季铵盐的应用,其特征在于:
所述β-羟基保护的双癸基季铵盐具有抗癌活性,用于治疗癌症疾病药物的制备。

说明书全文

具有抗癌活性的β-羟基保护的双癸基季铵盐及制备方法

技术领域

[0001] 本发明涉及一类具有抗癌功能的大黄素衍生物的合成,更具体地涉及一种具有抗癌活性的β-羟基保护的双癸基季铵盐及其制备方法。技术背景
[0002] 大黄素是一种在蓼科植物中含量较高的蒽醌化合物,具有多种生物活性,如抗感染、抗病毒、免疫抑制、保肝、抗肿瘤、抑制细胞增生、诱导细胞凋亡、阻止肿瘤的转移及抑制蛋白激酶等。但大黄素本身溶性差,毒性高,生物活性不够好,生物活性机理也不是很明确,因此大黄素还没有用于临床方面的报道。因此对大黄素进行化学修饰以提高抗癌活性是非常必要的。

发明内容

[0003] 本发明的目的在于提供一种具有抗癌活性的β-羟基保护的双癸基季铵盐及其制备方法。
[0004] 本 发 明 所 述 的β- 羟 基 保 护 的 双 癸 基 季 铵 盐 为 甲 基 二 正 癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲基-9,10-蒽醌基)甲基]铵盐,结构式如式I所示, 代表阴离子。
[0005] I。
[0006] 所述双癸基季铵盐为甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵, 表示Br-。,其制备方法包括以下步骤:(1) 大黄素与硫酸二甲酯在K2CO3存在下反应,生成1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌;
(2) 1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌与N-溴代丁二酰亚胺反应,生成
1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌;
(3) 1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌与氢溴酸反应,生成1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌;
(4) 1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌与N-甲基二癸基胺反应,合成甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵。
[0007] 上述制备方法的具体步骤如下:(1)1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌的合成:取1.6g大黄素溶解于120~
200ml丙中,加入10~12g无水,加热至回流,在回流的状态下慢慢滴加4~8ml (CH3O)2SO2,回流20~24h,冷却至室温,浓缩,加入50~100ml水搅拌30min,抽滤,用丙酮洗涤,得到黄色粉末粗产品,胶柱层析分离得到1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌;
(2)1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌的合成:取0.8g 1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌,1.2~1.6g N-溴代丁二酰亚胺(NBS),0.2~0.3g 过氧化苯甲酰和60~
160ml的CCl4加入三口烧瓶中,加热回流15~25h,冷却至室温,过滤,滤渣分别用CCl4,H2O和丙酮洗涤,再用硅胶柱层析分离得到1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌;
(3)1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌的合成:100mL三口烧瓶中加入
280~800mg 1,3,8-三甲氧基-6溴甲基-蒽醌、30~50mL乙酸,加热至回流;在氮气保护下滴加5~9mL 47%(重量比)氢溴酸水溶液,继续回流反应4~6 h;反应物倒入
200~300mL 冰水中,搅拌后抽滤,滤渣烘干,用硅胶柱层析分离得到1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌;
(4)甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵的合成:100mL三口瓶中加入125~500mg1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌、
50~150mL氯仿和127~468 mg N-甲基二癸基胺;在氮气保护下回流反应,用TLC跟踪反应进程,20~24 h后反应结束;旋转蒸发除去溶剂,浓缩物用硅胶层析柱上先用氯仿再用体积比为4:1的氯仿-乙醇逐渐梯度洗脱,从最后的洗脱液中分离得到甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵。
[0008] 其中步骤(1)、(2)所述硅胶柱层析的洗脱液为二氯甲烷;步骤(3)所述硅胶柱层析的洗脱液为氯仿。
[0009] 以上所述的β-羟基保护的双癸基季铵盐,其具有抗癌活性,用于治疗癌症疾病药物的制备。
[0010] 本发明合成甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵的合成路线如下所示:
上述的化合物1-5分别代表 大黄素、1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌、1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌、1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌、甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵。其中大黄素购自西安华萃生物技术有限责任公司,N-甲基二癸基胺购自飞翔化工(张家港)有限公司。
[0011] 通过体外癌细胞抑制实验表明,本发明报道的大黄素衍生物甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵可以有效杀死肝癌HepG2、胃癌BGC、神经瘤SH-SY5Y、胃癌AGS、子宫颈癌Hela等5种癌细胞。

具体实施方式

[0012] 以下通过实施例对本发明做进一步说明,但是本发明不仅限于此。
[0013] 实施例1:中间产物2 (1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌)的合成a取1.6g (5.8mmol)大黄素溶解于120ml丙酮中,加入12g (87mmol)无水碳酸钾,在回流的状态下慢慢滴加8ml (87mmol)的(CH3O)2SO2,回流24h,冷却室温,浓缩溶液,加入
100ml水搅拌30min,抽滤,用少量冷的丙酮洗涤,得到黄色粉末粗产品,硅胶柱层析分离得
1
到亮黄色固体1.52g,产率82.6%。产物结构经 H NMR、IR、熔点确定。中间产物2的表征数据如下:
m.p. 226~228 ℃ ; IR(KBr)νmax/cm-1: 2941,2843,1662,1601,1322,1241,1022,75
1
9. HNMR (400MHz, CDCl3), δ: 7.65(s, 1H, Ar-H), 7.34(d, 1H, J=2.4Hz, Ar-H),
7.11(s, 1H, Ar-H), 6.78(d, 1H, J=2.0Hz, Ar-H), 4.00(s, 3H, OCH3), 3.97(s, 3H, OCH3), 3.96(s, 3H, OCH3), 2.48(s, 3H, CH3).
实施例2:中间产物2 (1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌)的合成b
取1.6g (5.9mmol)大黄素溶解于200ml丙酮中,加入10g(73mmol)无水碳酸钾,在回流的状态下慢慢滴加4ml (43mmol)的(CH3O)2SO2,回流24h,冷却室温,浓缩溶液,加入80ml水搅拌30min,抽滤,用少量冷的丙酮洗涤,得到黄色粉末粗产品,硅胶柱层析分离得到亮黄色固体1.34g,产率72.8%。
[0014] 实施例3:中间产物2 (1,3,8-三甲氧基-6-甲基-9,10-蒽醌)的合成c取1.6g (5.9mmol)大黄素溶解于180ml丙酮中,加入10g(73mmol)无水碳酸钾,在回流的状态下慢慢滴加4ml (43mmol)的(CH3O)2SO2,回流20h,冷却室温,浓缩溶液,加入60ml水搅拌30min,抽滤,用少量冷的丙酮洗涤,得到黄色粉末粗产品,硅胶柱层析分离得到亮黄色固体1.30g,产率70.6%。
[0015] 实施例4:中间产物3 (1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌)的合成a取0.8g实施例1制备的化合物2(2.56mmol),1.6g N-溴代丁二酰亚胺(NBS) (9.0mmol),0.20g 过氧化苯甲酰(BPO)和60ml的CCl4加入三口烧瓶中,加热回流25h,冷却室温,过滤得到黄色固体,分别用少量的CCl4,H2O和丙酮洗涤,得到黄色固体,用硅胶柱1
层析分离得到黄色固体0.83g,产率83%。产物结构经 H NMR、IR、熔点确定。中间产物3的表征数据:
1
m.p.217.0~219.0℃; IR(KBr)νmax/cm-1:3436,1662,1597,1314,1253,1021,943. HNMR (400MHz, CDCl3), δ:7.83(d, 1H, J=1.2Hz, Ar-H), 7.33(d, 1H, J=2.4Hz, Ar-H),
7.11(d, 1H, J=1.2Hz, Ar-H), 6.78(d, 1H, J=2.4Hz, Ar-H), 4.52(s, 2H,-CH2),
4.02(s, 3H, OCH3), 3.97 (s, 3H, OCH3), 3.96 (s, 3H, OCH3).
实施例5:中间产物3 (1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌)的合成b
取0.8g实施例2制备的化合物2(2.56mmol),1.2g N-溴代丁二酰亚胺(NBS) (6.74mmol),0.24g BPO和100ml的CCl4加入三口烧瓶中,加热回流18h,冷却室温,过滤得到黄色固体,分别用少量的CCl4,H2O和乙醇洗涤,得到黄色固体,用硅胶柱层析分离得到黄色固体0.84g,产率84%。
[0016] 实施例6:中间产物3 (1,3,8-三甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌)的合成c取0.8g实施例3制备的化合物2(2.56mmol),1.60g N-溴代丁二酰亚胺(NBS) (9.0mmol),0.30g BPO和160ml的CCl4加入三口烧瓶中,加热回流15h,冷却室温,过滤得到黄色固体,分别用少量的CHCl3,H2O和乙醇洗涤,得到黄色固体,用硅胶柱层析分离得到黄色固体0.80g,产率80%。
[0017] 实施例7:化合物4 (1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌) 合成a100mL三口烧瓶中加入280.7mg ( 0.72mmol) 实施例4制备的1,3,8-三甲氧基-6溴甲基-蒽醌,30mL冰乙酸,加热至回流。在氮气保护下滴加5mL 氢溴酸( 47%水溶液 )。加完之后,继续回流反应6 h,析出大量橙色固体,结束反应。混合物倒入200mL 冰水中,搅拌后抽滤,固体烘干,用硅胶柱层析得到224.3mg纯品,产率85.8%。
[0018] 化合物4的表征数据如下:m.p.246~247 ℃ ; IR(KBr), νmax/cm-1: 3435, 3080, 1667, 1633, 1486, 1328,
1
1262, 763. H NMR(400MHz, CDCl3), δ: 12.23(s, H, OH), 12.17(s, H, OH), 7.82(d,
1H, J=1.6Hz, Ar-H), 7.40(d, 1H, J=1.6Hz, Ar-H), 7.30(d, 1H, J=1.6Hz, Ar-H),
6.71(d, 1H, J=2.8Hz, Ar-H), 4.47(s, 2H, CH2-N), 3.95(s, 3H, OCH3).实施例8:化合物4 (1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌) 合成b
100mL三口烧瓶中加入800mg ( 2.05mmol) 实施例5制备的1,3,8-三甲氧基-6溴甲基-蒽醌,50mL冰乙酸,加热至回流。在氮气保护下滴加9mL 氢溴酸( 47%水溶液 )。加完之后,继续回流反应5 h,析出大量橙色固体,结束反应。混合物倒入300mL 冰水中,搅拌后抽滤,固体烘干,用硅胶柱层析得到641.2mg纯品,产率86.2%。
[0019] 实施例9:化合物5 (甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵) 合成a100mL三口瓶中加入125.0mg(0.34mmol)实施例7制备的 化合物4 (1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌),50mL氯仿和127.9 mg (0.41mmol) N-甲基二癸基胺。在氮气保护下回流反应,用TLC跟踪反应进程,24 h后反应结束。旋转蒸发除去溶剂,剩余物在硅胶层析柱上先用氯仿再用氯仿-乙醇逐渐梯度洗脱,分离得到产品128.6mg,得率56.1%
化合物5的表征数据如下:
m.p.148.8-150.8 ℃ ; IR(KBr), νmax/cm-1: 3379, 2924, 2853, 1678, 1630,
1
1483, 1222, 1164, 758. H NMR(400MHz, CD3COCD3), δ: 12.09(s, 2H, OH),
7.87(d, 1H, J=1.2Hz, Ar-H), 7.59(d, 1H, J=1.2Hz, Ar-H), 7.25(d, 1H, J=2.4Hz, Ar-H), 6.95(d, 1H, J=2.4Hz, Ar-H), 4.65(s, 2H, CH2-N), 3.96(s, 3H, OCH3),
3.16~3.27(m, 4H, CH2-N-CH2), 2.97(s, 3H, N-CH3), 1.26~1.29(m, 32H, 2×(CH2)8),
0.86(t, 6H, J=6.8Hz, 2×CH3). 元素分析,C37H56BrNO5%,实测值(计算值),% : C 65.65 (65.86);H 8.61(8.37) ;N 1.99 (2.08)。
[0020] 实施例10:化合物5(甲基二正癸基-[2-(4,5-二羟基-7-甲氧基-9,10-蒽醌基)甲基]溴化铵) 合成b250mL三口瓶中加入500.0mg(1.38mmol) 实施例8制备的化合物4 (1,8-二羟基-3-甲氧基-6-溴甲基-9,10-蒽醌),150mL氯仿和468.0 mg (1.50mmol) N-甲基二癸基胺在氮气保护下回流反应,用TLC跟踪反应进程,20 h后反应结束。旋转蒸发除去溶剂,剩余物在硅胶层析柱上先用氯仿再用氯仿-乙醇逐渐梯度洗脱,分离得到产品484.2mg,得率52.0%
实施例11:化合物5体外细胞活性测试
将肝癌HepG2、胃癌BGC、神经瘤SH-SY5Y、胃癌AGS、子宫颈癌Hela等5种癌细胞和正
5
常人胚纤维细胞HELF细胞密度调整为1.5×10/ml,接种于96孔培养板,每孔100ul,置37℃, 5% CO2培养箱中培养24h;移去旧培养基,加入受试衍生物(用培养基将受试衍生物存储液稀释,设定不同作用浓度),每孔100uL,另设空白对照组、大黄素组和原料N-甲基二癸基胺组,每组设6个复孔。药物作用24 h后,吸弃含药培养基,于每孔中加入无血清、无酚红1640培养基100 uL,再加入MTT溶液10 uL,继续孵育4 h,终止培养;小心吸弃96孔板孔内上清液,每孔加入150uL DMSO,振荡10 min,于490 nm波长处在酶标仪上测定各孔光吸收值(OD值),计算半数抑制浓度IC50值。结果如表1所示。
[0021] 表1. 化合物5及大黄素等对不同种癌细胞株和正常细胞毒性IC50(μmol/L)
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