具有β-木糖苷酶和β-葡萄糖苷酶双重活性的糖基水解酶突变
体及其应用
技术领域
[0001] 本
发明属于
生物工程领域,具体涉及一种双功能糖基水解酶(GH)的一系列突变体。这些突变体的β-木糖苷酶和/或β-葡萄糖苷酶活性较之其野生型有所提高,并且均能专一性地从7-木糖紫杉烷类化合物上水解去除木糖基,本发明涉及这些突变体的
氨基酸序列以及编码这些氨基酸序列的核苷酸序列,以及这些突变体蛋白及其产生菌的应用。技术背景
[0002] 糖基水解酶(glycoside hydrolases,GH;glycosidases,EC3.2.1.X)可催化糖苷化合物的水解反应,在食品、造纸、药品、
饲料及生物
能源等领域具有广泛的用途。根据其氨基酸序列和结构特征进行分类,GH目前累计有100多个家族(http://www.cazy.org/),而GH3是上述100多个家族中最大的家族之一,已发现2400余个成员。β-木糖苷酶(β-D-xylosidases,EC3.2.1.37)作用于木糖苷化合物和木寡糖或木
二糖的非还原末端,释放出β-D-木糖和相应的配基。已发现的β-木糖苷酶属于糖基水解酶的3、30、39、43、52和54家族[Brunzelle,J.S.et al.Structure of the two-subsite beta-D-xylosidase from Selenomonas ruminantium in complex with 3-bis[tris(hydroxymethyl)methylamino]propane.Arch Biochem Biophys.2008,474:157-166],而
真菌来源的β-木糖苷酶目前见于GH3、43和54家族[Knob,A.et al.β-xylosidase from filamentous fungi:an overview.World J Microb Biot.2010,26:389-407]。β-葡萄糖苷酶(β-D-Glucosidases,EC3.2.1.21),则作用于
纤维素、纤维二糖和葡萄糖苷化合物的非还原末端,释放出β-D-葡萄糖和相应的配基。已发现的β-葡萄糖苷酶属于糖基水解酶的1、3、5、9、30、116家族[Michlmayr,H.et al.β‐Glucosidase activities of lactic acid bacteria:
mechanisms,impact on fermented food and human health.FEMS Microbiol
Lett.2013,352(1):1-10.],而真菌来源的β-葡萄糖苷酶见于GH3家族[Tiwari,P.et al.β-Glucosidases from the fungus Trichoderma:an efficient cellulase machinery in biotechnological applications.BioMed Res Int.2013,2013:203735.doi:10.1155/
2013/203735]。有些糖基水解酶则同时具有β-木糖苷酶和β-葡萄糖苷酶的双重活性,例如,克隆自香菇(Lentinula edodes)的两个糖基水解酶(代号LXYL-P1-1、LXYL-P1-2,两者的氨基酸序列一致性为97%,后者活性较前者高)不仅具有β-木糖苷酶活性,能专一性地水解去除7-木糖紫杉烷类化合物上的木糖基(故又称之为7-木糖紫杉烷糖基水解酶),还能水解β-葡萄糖苷,是一典型的双功能酶[Cheng,H.L.et al.Cloning and characterization of the glycoside hydrolases that remove xylosyl group from 7-β-xylosyl-10-deacetyltaxol and its analogues.Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248]。其中,活性较高的LXYL-P1-2氨基酸序列及其应用已
申请发明
专利:朱平,程海立,赵瑞玉,程克棣,何慧霞,孟超,朱慧新.具有β-木糖苷酶和β-葡萄糖苷酶活性的新的糖基水解酶及其应用.专利号ZL 201180031238.5;PCT
国际公布号WO 2011/160484 A1(美国专利公布号US
2013/0130330 A1)。
[0003] 本发明的申请者针对LXYL-P1-1与LXYL-P1-2中理化性质差异较大的氨基酸残基进行由LXYL-P1-1向LXYL-P1-2的定点及定点组合突变,发现针对特定氨基酸残基进行突变后,所制备得到的一些突变体的β-木糖苷酶和/或β-葡萄糖苷酶活性较之LXYL-P1-1有显著提高;针对LXYL-P1-2进行的定向进化研究,也获得了β-木糖苷酶和/或β-葡萄糖苷酶活性显著高于LXYL-P1-2的突变体;进一步研究发现,将野生型LXYL-P1-1和LXYL-P1-2以及上述所有突变体的第220位亮氨酸残基突变成甘氨酸残基(L220G突变),获得的所有L220G突变体(或称L220G突变型)的β-木糖苷酶和/或β-葡萄糖苷酶活性显著高于突变前的对照(第220位氨基酸残基为亮氨酸残基)。
发明内容
[0004] 本发明解决的技术问题是提供一类糖基水解酶LXYL-P1(即本发明所述的糖基水解酶LXYL-P1-1和LXYL-P1-2)系列突变体蛋白、编码该突变体蛋白的核苷酸序列、含有该核苷酸序列的重组质粒、含有该核苷酸序列或重组质粒的重组细胞,以及以上所述的突变体蛋白、其核苷酸序列、其重组质粒或重组细胞在水解去除糖苷化合物上木糖基和/或水解去除葡萄糖基方面的应用。
[0005] 为解决本发明的技术问题,提供如下技术方案:
[0006] 本发明技术方案的第一方面是提供糖基水解酶LXYL-P1(即本发明所述的糖基水解酶LXYL-P1-1和LXYL-P1-2)系列突变体蛋白,所述突变体蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO 3~SEQ ID NO 13,以及上述氨基酸序列SEQ ID NO 3~SEQ ID NO 13和LXYL-P1-1的氨基酸序列SEQ ID NO 1、LXYL-P1-2的氨基酸序列SEQ ID NO 2的L220G突变型。
[0007] 本发明技术方案的第二方面是提供编码第一方面所述突变体蛋白的核苷酸序列,优选SEQ ID NO 16~SEQ ID NO 26所示的核苷酸序列,以及上述核苷酸序列SEQ ID NO 16~SEQ ID NO 26和Lxyl-p1-1的核苷酸序列SEQ ID NO 14、Lxyl-p1-2的核苷酸序列SEQ ID NO 15在C658T659C660→G658G659A660或G658G659T660或G658G659C660或G658G659G660的密码子突变型。
[0008] 本发明技术方案的第三方面是提供含有第二方面所述核苷酸序列的重组质粒。
[0009] 本发明技术方案的第四方面是提供含有第二方面所述核苷酸序列或第三方面所述重组质粒的重组细胞。
[0010] 构成该重组细胞的宿主细胞既可以是含有Lxyl-p1-1和Lxyl-p1-2野生型基因的香菇(Lentinula edodes)细胞,也可以是异源宿主细胞。适宜的宿主生物包括细菌、放线菌、丝状真菌、
酵母菌、
植物细胞、动物细胞,举例如下:大肠埃希氏菌属(Escherichia species)、芽胞杆 菌属(Bacillus species)、链霉菌属(Streptomyces species)、酵母菌属(Saccharomyce species)、毕赤酵母菌属(Pichia species)、裂殖酵母菌属(Schizosaccharomyce species)、曲霉属(Aspergillus species)、木霉属(Trichoderma species)、青霉属(Penicillium species)、口蘑属(Tricholoma species)、香菇属(Lentinula species)、伞菌属(Agaricus species)、双子叶植物(dicotyledon)、以及昆虫细胞等。优选下列宿主:大肠杆菌(E.coli)、枯草芽孢杆菌(B.subtilis)、变铅青链霉菌(S.lividans)、
酿酒酵母(Saccharomyce cerevisiae)、巴斯德毕赤酵母(P.pastoris)、粟酒裂殖酵母(Schizosaccharomyce pombe)、黑曲霉(A.niger)、米曲霉(A.oryzae)、构巢曲霉(A.Nidulans)、里氏木霉(T.reesei)、绿色木霉(T.Viride),产黄青霉(Penicillium chrysogenum)、口蘑(Tricholoma mongolicum)、香菇(L.edodes)、双孢蘑菇(Agaricus bisporus)、拟南芥(Arabidopsis thaliana)、以及草地贪夜蛾(Spodoptera frugiperda)Sf9细胞。
[0011] 本发明技术方案的第五方面是提供本发明第一方面所述突变体蛋白、第二方面所述核苷酸序列、第三方面所述重组质粒、第四方面所述重组细胞在水解去除糖苷化合物上木糖基和/或水解去除葡萄糖基方面的应用。
[0012] 本发明还提供所述cDNA序列的应用,即将所述突变体蛋白的编码基因(cDNA)
片段与适当表达载体连接,构建重组质粒,后者被导入合适的宿主细胞,转化后的重组细胞,通过其产生的重组酶(即所述的突变体蛋白)用于水解糖苷化合物底物方面的应用。
[0013] 优选的作为底物的糖苷化合物选自含有木糖基的化合物和/或含有葡萄糖基的化合物。其中,优选的含有木糖基的糖苷化合物选自紫杉烷木糖苷类化合物;所述的紫杉烷木糖苷类化合物,优选7-木糖紫杉烷,可以是天然形成的、或是非天然产生的,如化学或生物合成的、或半合成的。
[0014] 本发明提供所述的重组酶或含有该酶的重组细胞,在水解去除木糖基方面的应用,包括但不限于用于7-木糖紫杉烷的生物转化或生物催化,所述的7-木糖紫杉烷底物包括但不限于:7-木糖紫杉醇、7-木糖-10-去乙酰紫杉醇、7-木糖三尖杉宁
碱、7-木糖-10-去乙酰三尖杉宁碱、7-木糖紫杉醇C、7-木糖-10-去乙酰紫杉醇C、7-木糖巴卡亭III和7-木糖-10-去乙酰巴卡亭III;这些底物单独、或彼此混合被催化,或与其他紫杉烷相混合被催化。
水解去除木糖基后得到的产物包括但不限于:紫杉醇、10-去乙酰紫杉醇、三尖杉宁碱、10-去乙酰三尖杉宁碱、紫杉醇C、10-去乙酰紫杉醇C、巴卡亭III和10-去乙酰巴卡亭III。
[0015] 本发明的糖基水解酶LXYL-P1系列突变体蛋白在应用方面的技术方案优选为:所述的突变体蛋白在以7-木糖紫杉烷为原料制备7-羟基紫杉烷时的应用。
[0016] 其中,所述的7-木糖紫杉烷原料选自带有木糖基的紫杉烷类的混合物,进一步优选的,紫杉烷类的混合物选自红豆杉属(Taxus)植物组织,这些红豆杉属植物包括:欧洲红豆杉(T.baccata)、短叶红豆杉(T.brevifolia)、喜
马拉雅红豆杉(T.wallichiana)、曼地亚红豆杉(T.media)、中国红豆杉(T.chinensis)、南方红豆杉(T.chinensis var.mairei)、
云南红豆杉(T.yunnanensis)、以及东北红豆杉(T.cuspidate),或者是这些植物的细胞培养物,或者是能够产生7-木糖紫杉烷类化合物的
微生物细胞培养物。这里所述的植物组织包括植物的根、针叶、树皮以及整个苗 木。
[0017] 发明详述:
[0018] 下面对本发明的技术方案做进一步的说明:
[0019] 本发明提供的糖基水解酶LXYL-P1系列突变体蛋白,其野生型蛋白LXYL-P1-1和LXYL-P1-2系由一种口蘑科(Tricholomareceae)真菌香菇(Lentinula edodes M95.33)产生。所述突变体蛋白的编码基因(cDNA)被导入宿主细胞后,所形成的突变体蛋白,可位于细胞内或分泌到细胞外,用于转化7-木糖紫杉烷为紫杉醇或其类似物。
[0020] 本发明所述的cDNA序列,可以用来构建各种不同类型的重组表达质粒,后者可被转移到真菌细胞、或者被转移到原核细胞(包括大肠杆菌、放线菌)、植物细胞和动物细胞等宿主细胞,所述突变体基因的表达可以使这些宿主获得将7-木糖紫杉烷水解为7-羟基紫杉烷的能
力。重组的宿主还可以用于其他含
糖化合物的生物转化。
[0021] 本发明提供了所述突变体蛋白的应用。
[0022] 本发明还提供了一种紫杉醇及其类似物的生物转化制备方法:以7-木糖紫杉烷为原料,用上述重组细胞(如重组毕赤酵母)水解去除原料上的木糖基,得到紫杉醇或其类似物。
[0023] 本发明所述的溶解底物的
溶剂,除非有明确说明,一般是指:水、甲醇、
乙醇、乙酸乙酯、丙
酮、正己烷、氯仿、二氯甲烷、N,N-二甲基甲酰胺(DMF)、二甲基亚砜(DMSO)。
[0024] 本发明提供的方法中制备的紫杉醇或其类似物(产物),以及所用的C-7-木糖紫杉烷原料(底物),其结构特征如通式I所示。
[0025]
[0026]
[0027] 注:Ph为苯基,Bz为苯甲酰基,Ac为乙酰基
[0028] 有益技术效果
[0029] 本发明获得的糖基水解酶LXYL-P1系列突变体基因,当被导入上述宿主细胞后,能够表达出β-木糖苷酶和/或β-葡萄糖苷酶活性比突变前更高的突变体蛋白;该突变体蛋白、或含有该突变基因的重组细胞在水解去除糖苷化合物上木糖基和/或水解去除葡萄糖基方面比突变前发挥更高的效率,可应用于对7-木糖紫杉烷底物的生物转化或生物催化,生成相应的7-羟基紫杉烷,后者可被应用于紫杉醇或其类似物的半合成。
附图说明
[0030] 图1 LXYL-P1-1与LXYL-P1-2氨基酸序列差异比较.
[0031] 图2 应用PCR技术构建几种LXYL-P1-1突变体.
[0032] 图3 LXYL-P1-2定向进化及突变体的筛选.
[0033] 图4 LXYL-P1系列突变体重组细胞催化7-木糖-10-去乙酰基紫杉醇提取物的HPLC分析.
[0034] 图5 LXYL-P1系列突变体重组细胞催化7-木糖-10-去乙酰基巴卡亭III的HPLC分析.
[0035] 图6 应用全质粒PCR技术构建L220G突变型(以LXYL-P1-2-L220G为例).
[0036] 图7 L220G系列突变体的单位湿重细胞酶活性时间曲线.
具体实施方式
[0037] 本发明通过下列
实施例予以进一步阐明,这些实施例是仅用于说明性的,而不是以任何方式限制本发明
权利要求的范围。
[0038] 实施例1:LXYL-P1-1突变体LXYL-P1vs1~P1vs13的构建
[0039] 如文献[Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248]所述,β-木糖苷酶基因(Lxyl-p1)至少有2个高度同源的核苷酸序列及相应的表达产物LXYL-P1-1(或简称P1-1)和LXYL-P1-2(或简称P1-2),其氨基酸序列的一致性为97.3%,后者水解木糖苷的活性是前者的两倍以上。这两个蛋白的cDNA序列(Lxyl-p1-1,Lxyl-p1-2)均包含1个长度为2412bp的开放阅读
框架(ORF),编码803个氨基酸。如图1所示,这两个蛋白共有21个氨基酸存在差异。
[0040] 通过对LXYL-P1-1和LXYL-P1-2的差异氨基酸进行亲疏水和极性差异的比较分析,发现第3、69、72、91、192、310、318、322、327、334和368位共有11个位点的氨基酸残基性质差异较大。其中第3、69、192、310、318、327和334位的氨基酸在LXYL-P1-1中为亲水的极性氨基酸,而在LXYL-P1-2中为疏水的非极性氨基酸;而第72、91和368位则正好相反,在LXYL-P1-1中为疏水的非极性氨基酸,在LXYL-P1-2中为亲水的极性氨基酸;第322位则是在LXYL-P1-1为酸性氨基酸,而在LXYL-P1-2中为碱性氨基酸。
[0041] 以LXYL-P1-1的cDNA为模板,应用PCR技术对上述11个氨基酸进行定点或定点组合突变,突变方向主要由LXYL-P1-1向LXYL-P1-2的突变(I368E除外),所用上、下游引物见表1;应用PCR技术构建几种LXYL-P1-1突变体的过程如图2所示。
[0042] 表1.由LXYL-P1-1向LXYL-P1-2定点或定点组合突变所用引物序列
[0043]
[0044] PCR反应体系组成:
[0045]
[0046] PCR扩增条件:
[0047] 95℃,5min;
[0048] 94℃,30sec;60℃,30sec;72℃,1min;30cycles;
[0049] 72℃,10min;
[0050] 4℃,∞
[0051] PCR产物以1.0%的琼脂糖凝胶
电泳检测。
[0052] 重叠PCR反应体系组成:
[0053]
[0054] PCR扩增条件(1):
[0055] 95℃,5min;
[0056] 94℃,30sec;45℃,30sec;72℃,1min30sec;5cycles;
[0057] 72℃,5min;
[0058] 4℃,∞;
[0059] 向上述PCR反应中加入基因的上、下游引物以获得全长cDNA片段,PCR反应体系组成:
[0060]
[0061] PCR扩增条件(2):
[0062] 95℃,5min;
[0063] 94℃,30sec;60℃,30sec;72℃,1min30sec;30cycles;
[0064] 72℃,5min;
[0065] 4℃,∞;
[0066] 参考文献[Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248]方法,将扩增得到的cDNA序列分别连接到毕赤酵母胞内表达载体pPIC3.5K上,得到相应的重组质粒pPIC3.5K-LXYL-P1vs1~pPIC3.5K-LXYL-P1vs13,经测序验证后,分别导入毕赤酵母GS115细胞,筛选获得高拷贝的转化子GS115-3.5K-P1vs1(简称P1vs1)、GS115-3.5K-P1vs2(简称P1vs2)、 GS115-3.5K-P1vs4(简称P1vs4)、GS115-3.5K-P1vs5(简称P1vs5)、GS115-3.5K-P1vs6(简称P1vs6)、GS115-3.5K-P1vs8(简称P1vs8)、GS115-3.5K-P1vs9(简称P1vs9)、GS115-3.5K-P1vs10(简称P1vs10)、GS115-3.5K-P1vs11(简称P1vs11)、GS115-3.5K-P1vs12(简称P1vs12)和、GS115-3.5K-P1vs13(简称P1vs13),P1vs1~P1vs13及其突变位点的氨基酸残基如表2所示。
[0067] 转化子筛选与培养、外源蛋白诱导表达、β-木糖苷酶与β-葡萄糖苷酶活性测定参照文献[Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248和菌物学报.2013,32(5):846-854]方法进行,观察到β-木糖苷酶和/或β-葡萄糖苷酶活性较之其野生型有所提高的突变体有:P1vs1、P1vs4、P1vs5、P1vs8、P1vs9、P1vs10、P1vs11、P1vs12和P1vs13。
[0068] 表2.LXYL-P1-1突变体及其突变位点
[0069]
[0070] 实施例2:LXYL-P1-2定向进化突变体的获得
[0071] 以LXYL-P1-2的cDNA为模板,应用易错PCR技术对LXYL-P1-2进行定向进化,所用方法及条件如下:
[0072]
[0073]
[0074] 加ddH2O补足50μL
[0075] PCR扩增条件:
[0076] 94℃,5min;
[0077] 94℃,30sec;55℃,30sec;72℃,2min40sec;30cycles;
[0078] 72℃,10min;
[0079] 4℃,∞;
[0080] 参照文献[中国医药生物技术.2013,8(4):241-246]方法,利用In-Fusion技术将易错PCR片段连接到载体(pPIC3.5K)上(易错PCR片段两端与线性化载体两端同源区段长度均为100bp),转化毕赤酵母细胞构建突变文库。
[0081] 高酶活性突变体初筛方法:挑取在甲醇诱导平板(BMMY平板)上的单菌落于96深孔板中,每孔加入100μL PNP-Xyl测活液,50℃反应20min,每孔加入500μL饱和Na2B4O7溶液终止反应,3,000r/min离心10min。利用排枪每孔取200μL上清至96孔板中,测定其OD405吸光值并与野生型GS115-3.5K-LXYL-P1-2的OD405吸光值相比较,筛选吸光值显著提高的突变体。突变体经摇瓶培养复筛[培养方法及活性测定参照Mol Cell Proteomics.2013,12(8):
2236-2248和菌物学报.2013,32(5):846-854方法进行],从中得到2个活性显著提高的突变体P1-2-EP1(突变位点:S91D)和P1-2-EP2(突变位点:T368E)。LXYL-P1-2定向进化和突变体筛选过程如图3所示。
[0082] 实施例3:定点(组合)突变和定向进化突变体重组蛋白的分离纯化
[0083] 定点(组合)突变和定向进化突变体重组蛋白的分离纯化参照文献[Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248和中国医药生物技术.2014,9(5):381-384]方法进行,纯化后的蛋白已达到电泳纯和HPLC级色谱纯。
[0084] 实施例4:定点(组合)突变和定向进化突变体重组细胞酶活性、重组蛋白酶活性分析
[0085] 参考文献[Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248和中国医药生物技术.2014,9(5):381-384]方法,以生色底物p-nitrophenyl-β-D-xylopyranoside(PNP-Xyl)和p-nitrophenyl-β-D-glucopyranoside(PNP-Glc)分别测定突变体重组蛋白的β-木糖苷酶、β-葡萄糖苷酶活性(U/mg=nmol/min/mg);突变体重组蛋白水解7-木糖-10-去乙酰紫杉醇(XDT)的最大 反应速度、米氏常数、催化常数或转换数分别以Vmax、Km、kcat表示,其中,kcat值和kcat/Km比值(催化效率)与酶活性呈正相关;Km值反映出酶与底物的亲和力,Km值越低亲和力越大。结果如表3~6所示。
[0086] 表3.LXYL-P1-1定点突变体蛋白β-木糖苷酶、β-葡萄糖苷酶活性
[0087]
[0088] LXYL-P1-1为对照;P1vs1~P1vs13为LXYL-P1-1定点突变体蛋白;n=3,*P<0.05vs对照,**P<0.01vs对照.
[0089] 表4.LXYL-P1-1定点突变体蛋白水解XDT的β-木糖苷酶动力学参数
[0090]
[0091] LXYL-P1-1为对照;P1vs1~P1vs13为LXYL-P1-1定点突变体蛋白;n=3,*P<0.05vs对照,**P<0.01vs对照.
[0092] 表5.LXYL-P1-2定向进化突变体蛋白β-木糖苷酶、β-葡萄糖苷酶活性
[0093]
[0094] LXYL-P1-2为对照;P1-2-EP1和P1-2-EP2为LXYL-P1-2定向进化突变体蛋白;n=3,*P<0.05vs对照,**P<0.01vs对照.
[0095] 表6.LXYL-P1-2定向进化突变体蛋白水解XDT的β-木糖苷酶动力学参数
[0096]
[0097] LXYL-P1-2为对照;P1-2-EP1和P1-2-EP2为LXYL-P1-2定向进化突变体蛋白;n=3,*P<0.05vs对照,**P<0.01vs对照.
[0098] 实施例5:定点(组合)突变和定向进化突变体重组细胞水解7-木糖-10-去乙酰基紫杉醇提取物
[0099] 将突变体P1vs1、P1vs4、P1vs5、P1vs8、P1vs9、P1vs10、P1vs11、P1vs12、P1vs13、P1-2-EP1、P1-2-EP2重组细胞及其野生型LXYL-P1-1和LXYL-P1-2重组细胞按干重16mg/mL的比例加入至pH4.0的0.1M
醋酸缓冲液中,与2mg/mL 7-木糖-10-去乙酰基紫杉醇提取物[7-木糖-10-去乙酰紫杉醇(XDT)62.1%,7-木糖-10-去乙酰基三尖杉宁碱(XDC)12.8%,7-木糖-
10-去乙酰基紫杉醇C(XDTC)17.0%]底物混匀,反应体积1mL,45℃恒温水浴摇床振荡反应
24h,转化反应后的混合物以3倍体积乙酸乙酯萃取3遍,浓缩后以300μL甲醇溶解,取100μL样品以HPLC分析转化率与产量。结果:底物无残留,全部转化为相应的产物:10-去乙酰基紫杉醇(DT)、10-去乙酰基三尖杉宁碱(DC)、10-去乙酰基紫杉醇C(DTC)。以P1vs1为例,结果如图4所示。
[0100] 实施例6:定点突变、定点组合突变和定向进化突变体重组细胞水解7-木糖-10-去乙酰基巴卡亭III
[0101] 将突变体P1vs1、P1vs4、P1vs5、P1vs8、P1vs9、P1vs10、P1vs11、P1vs12、P1vs13、P1-2-EP1、P1-2-EP2重组细胞及其野生型LXYL-P1-1和LXYL-P1-2重组细胞按干重16mg/mL的比例加入至pH4.0的0.1M醋酸缓冲液中,与2mg/mL 7-木糖-10-去乙酰基巴卡亭III(XDB)底物混匀,反应体积1mL,45℃恒温水浴摇床振荡反应24h,转化反应后的混合物以3倍体积乙酸 乙酯萃取3遍,浓缩后以300μL甲醇溶解,取100μL样品以HPLC分析转化率与产量。结果:底物无残留,全部转化为相应的产物:10-去乙酰基巴卡亭III(DB)。以P1vs1为例,结果如图5所示。
[0102] 实施例7:Leu220→Gly220定点突变和L220G系列突变体重组细胞的酶活性分析[0103] 现以LXYL-P1-1、LXYLP1-2、P1vs4、P1-2-EP2为例作如下说明。
[0104] 依据有关结构生物学信息,发现位于酶活性中心附近的第220位Leu残基可能影响XDT等底物进入酶的活性腔,故通过定点突变将其替换为
侧链更短的Gly残基(L220G突变)。分别以LXYL-P1-1、LXYL-P1-2、P1vs4、P1-2-EP2的cDNA为模板,应用PCR技术对第220位氨基酸进行Leu220→Gly220定点突变,突变体LXYL-P1-1-L220G和P1vs4-L220G所用上游引物P1-
1-L220G-F为:5′AGAAAT TACATCGAATTCGACGGAGTT3′;所用下游引物P1-1-L220G-R为:5′GAATTCGATGTA ATTTCTCGATGTTTC3′。突变体LXYL-P1-2-L220G和P1-2-EP2-L220G所用上游引物P1-2-L220G-F为:5′AGAAAT TATATCGACATCGACGGAGTT3′;所用下游引物P1-2-L220G-R为:5′GATGTCGATATA ATTTCTCGATGTTTC3′。分别以含有Lxyl-p1-1、P1vs4、Lxyl-p1-2、P1-2-EP2的重组质粒DNA(pPIC3.5K-LXYL-P1-1、pPIC3.5K-LXYL-P1vs4、pPIC3.5K-LXYL-P1-2、pPIC3.5K-LXYL-P1-2-EP2)为模板,应用全质粒PCR技术构建L220G突变体,密码子突变方向为:C658T659C660→G658G659A660或G658G659T660或G658G659C660或G658G659G660,即可得到L220G突变。以LXYL-P1-2-L220G突变体为例,如图6所示。
[0105] PCR反应体系组成:
[0106]
[0107] PCR扩增条件:
[0108] 98℃,30sec;
[0109] 98℃,10sec;60℃,15sec;72℃,6min;30cycles;
[0110] 72℃,10min;
[0111] 4℃,∞
[0112] PCR产物以1.0%的琼脂糖凝胶电泳检测。
[0113] PCR产物纯化回收;用Dpn I对PCR产物酶切,酶切体系为100μL:10×NEBuffer 10μL,100×BSA 1μL,Dpn I 4μL,PCR片段5μg,加ddH2O补齐至100μL,37℃酶切1h;回收11.44kb的酶切后目的载体;转化E.coli DMT感受态细胞,筛选阳性转化子,分别得到突变体pPIC3.5K-LXYL-P1-1-L220G、pPIC3.5K-LXYL-P1vs4-L220G、pPIC3.5K-LXYL-P1-2-L220G、pPIC3.5K-LXYL-P1-2-EP2-L220G重组质粒。
[0114] 参考文献[Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248]方法,将所得重组质粒pPIC3.5K-LXYL-P1-1-L220G、pPIC3.5K-LXYL-P1vs4-L220G、pPIC3.5K-LXYL-P1-2-L220G、pPIC3.5K-LXYL-P1-2-EP2-L220G,经测序验证后,分别导入毕赤酵母GS115细胞,筛选获得高拷贝的转化子GS115-3.5K-P1-1-L220G(简称P1-1-L220G)、GS115-3.5K-P1vs4-L220G(简称P1vs4-L220G)、GS115-3.5K-P1-2-L220G(简称P1-2-L220G)、GS115-3.5K-P1-2-EP2-L220G(简称P1-2-EP2-L220G)。
[0115] 转化子筛选与培养、外源蛋白诱导表达、β-木糖苷酶与β-葡萄糖苷酶活性测定参照文献[Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248和菌物学报.2013,32(5):846-854]方法进行,观察到突变体GS115-3.5K-P1-1-L220G(简称P1-1-L220G)、GS115-3.5K-P1vs4-L220G(简称P1vs4-L220G)、GS115-3.5K-P1-2-L220G(简称P1-2-L220G)、GS115-3.5K-P1-2-EP2-L220G(简称P1-2-EP2-L220G)的单位湿重细胞β-木糖苷酶活性(生色底物PNP-Xyl)和β-葡萄糖苷酶活性(生色底物PNP-Glc)较之其突变前的对照GS115-3.5K-P1-1(简称LXYL-P1-1)、GS115-3.5K-P1vs4(简称P1vs4)、GS115-3.5K-P1-2(简称LXYL-P1-2)、GS115-3.5K-P1-2-EP2(简称P1-2-EP2)均有所提高。结果如图7所示。
[0116] 将突变体P1-1-L220G、P1vs4-L220G、P1-2-L220G、P1-2-EP2-L220G重组细胞及其突变前的对照GS115-3.5K-P1-1(简称LXYL-P1-1)、GS115-3.5K-P1vs4(简称P1vs4)、GS115-3.5K-P1-2(简称LXYL-P1-2)、GS115-3.5K-P1-2-EP2(简称P1-2-EP2)按限量的干重8mg/mL的比例加入至pH4.0的0.1M醋酸缓冲液中,与10mg/mL 7-木糖-10-去乙酰基紫杉醇(XDT)底物混匀,反应体积1mL,45℃恒温水浴摇床振荡反应24h,取100μL转化反应后的混合物,以
900μL甲醇溶解,取100μL样品以HPLC分析转化率。结果如表7所示,上述L220G突变体水解XDT的转化率均较各自突变前的对照有明显提高。
[0117] 参考文献[Mol Cell Proteomics.2013,12(8):2236-2248和中国医药生物技术.2014,9(5):381-384]方法,分离纯化上述突变体重组蛋白,以生色底物PNP-Xyl和PNP-Glc分别测定L220G系列突变体重组蛋白的β-木糖苷酶、β-葡萄糖苷酶活性(U/mg=nmol/min/mg);L220G系列突变体重组蛋白水解7-木糖-10-去乙酰紫杉醇(XDT)的最大反应速率以Vmax表示,米氏常数以Km表示,转换数以kcat表示。表8显示,各个突变体β-木糖苷酶和/或β-葡萄糖苷酶的比活力均超过各自的对照。表9表明,L220G系列突变体水解XDT的kcat/Km比值基本接近或超过其突变前对照,而它们的kcat均比各自对照有非常显著的提高。将L220G突变引入到表2、表5所示的其他LXYL-P1系列突变体中,亦能够提高这些突变体β-木糖苷酶和/或β-葡萄糖苷酶活性。
[0118] 表7.L220G系列突变体重组细胞的XDT转化率
[0119]
[0120] n=3,*P<0.05vs对照,**P<0.01vs对照.
[0121] 表8.L220G系列突变体蛋白β-木糖苷酶和β-葡萄糖苷酶活性
[0122]
[0123] P1-1-L220G、P1-2-L220G、P1vs4-L220G和P1-2-EP2-L220G为L220G系列突变体;LXYL-P1-1、LXYL-P1-2、P1vs4、P1-2-EP2为各自突变前对照;n=3,*P<0.05vs对照,**P<
0.01vs对照.
[0124] 表9.L220G系列突变体蛋白水解XDT的β-木糖苷酶动力学参数
[0125]
[0126] P1-1-L220G、P1-2-L220G、P1vs4-L220G和P1-2-EP2-L220G为L220G系列突变体;LXYL-P1-1、LXYL-P1-2、P1vs4、P1-2-EP2为各自突变前对照;n=3,*P<0.05vs对照,**P<
0.01vs对照。