【発明の詳細な説明】 ＥＣ−ＳＯＤの形質転換生産 この発明は、ヒト細胞外スパーオキシドジスムターゼ（ＥＣーＳＯＤ）をエンコードするか、形質転換（トランスジェニック）非ヒト哺乳動物の産生により天然の細胞外スパーオキシドジスムターゼのスパーオキシド不均化性を有する前記デスムターゼ蛋白の変異型をエンコードするＤＮＡ配列からなる哺乳動物発現システム、およびＥＣ−ＳＯＤまたはその変異型を表現しうる形質転換哺乳動物に関する。 さらに、この発明は組換えヒトＥＣ−ＳＯＤまたはその変異型の産生に有利に使用されるゲノムＤＮＡ配列に関する。 酸素の存在下での生体は、各種の生体酸化に関して形成されるスパーオキシドラジカルのような毒性の酸素還元代謝物に対する多数の防御機構の発生をしいられている。 防御因子には、スパーオキシドラジカルを不均化し、哺乳動物の細胞と組織に比較的一定量見出されるスパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）がある。 分泌細胞外スパーオキシドジスムターゼ（ＥＣ−ＳＯＤ）は哺乳動物に存在する３つの異なるＳＯＤイソエンチームの１つである〔１〕。 血漿、リンパ液または関節液には主要なイソ酵素があるが、主に組織の間隔に存在する〔６−８〕。 他の２つのイソ酵素は、細胞内サイトゾル酵素である二量ＣｕＺｎ−ＳＯＤとミトコンドリヤマトリックスに見出される四量Ｍｎ−ＳＯＤである〔９−１１〕。 ヒトＥＣ−ＳＯＤｃＤＮＡが単離、シーケンス化されて〔１２〕、その組換え蛋白が哺乳動物の細胞で産生されている（ＷＯ８７／０１３７８）。 ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ． １で示したＤＮＡ配列はアミノ酸残基１−２２２に対応するｃＤＮＡ配列の１部である。 ＥＣ−ＳＯＤは分泌蛋白であり、また完全ｃＤ ＮＡは成熟および組換えＥＣ−ＳＯＤにない１８アミノ酸長のシグナル配列をエンコードしている〔１２〕。 ｃＤＮＡ配列から演澤されるように、成熟酵素のサブユニットの分子量は、２４，２００である。 炭化水素置換分の正確なサイズは未知であるが、ゲルクロマトグラフィでの見掛け分子量は１４０−１５０ｋＤａ である。 ＥＣ−ＳＯＤは糖蛋白含有の四量ＣｕとＺｎである。 ＳＤＳ−ページ電気泳動上、サブユニットは３０−３２ｋＤＡの分子量を示す。 配列は１つのグリコシル化部位Ａ _sn −８９を含む。 四量体は４つのＣｕと４つのＺｎ原子を含み、 各サブユニットは１つの銅と１つの亜鉛原子を結合している。 金属原子を含む活性部位が、細胞内ＣｕＺｎＳＯＤ _sの活性部位に相同である。 アミノ酸配列１−９６を構成するＥＣ−ＳＯＤの部分は、ポリペプチドのオリゴマーの形成に含まれると考えられ、一方アミノ酸配列９７−１９３を構成するＥＣ−ＳＯＤの部分は酵素の活性部位からなると考えられる。 天然蛋白のグルカンは完全な研究がされていないが、成熟酵素は、レクチン類コンカナバリンＡ、小麦胚レクチンとレンチルレクチンに結合する。 ＥＣ−ＳＯ Ｄの基本的かつ顕著な性質は、ヘパリンやヘパリン硫酸塩のようなある種のグリコサミノグルカン類への親和性である〔１，３，４，１６，１７〕。 細胞表面の糖衣と結合組織マトリックスに存在する後者はＥＣ−ＳＯＤの重要な生理的リガンドである。 この親和性によって、ＥＣ−ＳＯＤは導管内で、血漿相と内皮の糖衣との平衡を形成する〔３ ，４，１５，１６〕。 組織ては、全てのＥＣ−ＳＯＤは、実質的に間質スペースを細胞表面でヘパリン硫酸塩に固定されて存在する〔８〕。 静注で、ＥＣ−ＯＤは急速に内皮の表面に結合し、導管内で長い半減期間（１ ５〜２０時間）を示す〔８，１５〕。 経口投与すると、ＣｕＺｎ−ＳＯＤは治療作用のホストを奏することか分っている〔２１−２５〕。 ＥＣ−ＳＯＤでの実験は比較的少ない〔２６−３３〕が、このイソ酵素はより強いように思われる。 この高い効力は、明らかに酵素の特異な薬力学的性質に関連している。 酵素のヘパリン結合ドメインは、陽荷電のカルボキシ末端にある〔１９〕。 このドメインは容易に蛋白分解され、〔２０〕生体内でヘパリン親和性が減少しかつ欠けたＥＣ−ＳＯＤ型となる〔８〕。 組織と血漿から単離したＥＣ−ＳＯＤはヘパリン親和性に関して異質であり、 ヘパリン−セファローズでのクロマトグラフィーで３つのサブクラスに分けることができる。 結合しないＡ、中間の親和性を有するＢと比較的強いヘパリン親和性を有するＣ。 生体内で、ヘパリン親和性の相関は、細胞表面と間質結合組織で起こるヘパリン硫酸塩プロテオクルカンへの結合である。 ヘパリンの注射で、結合酵素は、ヘパリン硫酸塩の代りにヘパリンに結合するため血漿に放出される。 ＥＣ−ＳＯＤＣは、体内の殆どの細胞タイプの表面に結合するとみられるが、 主な例外は、赤血球と中性好性白血球である。 各種のＥ． コリとの結合は証明されていない。 この結合パターンは、ＥＣ−ＳＯＤＣが体内の殆どの正常細胞を保護するポテンシャルを有し、親和性を欠く微生物を保護せずかつ活性化された中性好性白血球の表面で作られたスパーオキシド基とあまり干渉をしないとみられる。 血漿中で、ＥＣ−ＳＯＤ ＡとＥＣ−ＳＯＤ Ｂはごく少量で組織中に存在するとみられることから、定量的に重要であるとみられる。 今日までの研究で、天然環境特に血漿中で、３つのタイプのＥＣ−ＳＯＤが存在することが示されている。 加えて、ＥＣ−ＳＯＤは、血漿と内皮表面の間の平衡を形成している。 組換えＥＣ−ＳＯＤが、乳房細胞、酵母と細菌中で産生されている。 しかし、 組換えＥＣ−ＳＯＤをコスト面で有効で大規模に産生することはできていない。 組換え遺伝子の形質転換動物での発現と形質転換動物を一般に作ることが報告されている。 例えば、米国特許第４，７３６，８６６号は、ｃ−ｍｙｃガン遺伝子を持つ形質転換マウスを開示している。 Ｏｕｒｙら〔５４〕は、ヒトβ−アクチンプロモータのコントロール下でＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮＡを持つ形質転換マウスの発生を報告している。 これら２つの報告での形質転換動物は、動物疾患モデルとしてまた特異酵素の生理機能の研究用に使用するに発生されている。 形質転換動物での組換え蛋白の産生に関する報告には次のものがある。 ＰＣＴ 公告 ＷＯ ８２／０４４４３号（マウス接合子の前核に注射したウサギβ−グロビン遺伝子ＤＮＡフラグメント）；ＥＰＯ公告０２６４１６６号（乳房組織特異表現用の乳漿酸性蛋白プロモータのコントロール下での肝炎Ｂ表面抗原と組織プラスミノーゲンアクチベータ遺伝子）；ＥＰＯ公告０２４７４９４号（各種の型のインシュリンをエンコードする異種ＤＮＡ含有の形質転換マウス）；ＰＣＴ 公告ＷＯ ８８／００２３９号（乳漿蛋白プロモータのコントロール下での因子ＩＸをエンコードするＤＮＡの組織特異発現）；ＰＣＴ公告Ｗ０ ８８／０１６ ４８号（乳房ラクトゲン誘因調節領域と異種蛋白をエンコードする構造領域とからなる組換え発現システムを含有する乳房分泌細胞を有する形質転換哺乳動物） ；ＥＰＯ公告０２７９５８２号（形質転換マウスでのラットβ・カゼインプロモータのコントロールでのトクロラムフエニコールアセチルトランスフエラーゼの組織特異発現）；ＷＯ ９１／０３５５１号（形質転換動物の乳での生長ホルモンの産生）とＷＯ９１／０８２１６号（ウシ種と形質転換法による組換えポリペプチドの産生）。 異なった乳蛋白遺伝子からの遺伝子コントロール要素が、形質転換動物のミルクでの組換え蛋白の直接生産に用いられている〔３４−３６〕 。 農場動物でのこのような形質転換技術を用いることは、医薬的蛋白を乳で生産する可能性を示すものである。 多くのｃＤＮＡと形質転換フラグメントが今日まで形質転換動物での乳線発現系で評価されているにもかかわらず、発現のレベルに影響する因子を規定するのは困難である。 このルートで生産された組換え蛋白の事後翻訳修正の詳細な分析に関した定性的観点に限られた注目がなれさており、蛋白の機能が事後翻訳修正に密接に関連している形質転換動物からの乳での酵素的官能性マルチマー金属蛋白の生産は報告されていない。 発明の要約 この発明の目的は、組換えヒトＥＣ−ＳＯＤを高収率で、生産する手段を提供することにある。 従って、１つの観点で、この発明はヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するＳＥ Ｑ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその変異型をエンコードするＤＮＡ配列からなり、そのＤＮＡ配列は、ハイブリッド遺伝子を有する非ヒト哺乳動物の成人雌の乳腺で発現できるハイブリッド遺伝子を形成するように哺乳動物の乳蛋白をエンコードする遺伝子の調節要素と結合され、従ってそのＤＮＡ配列によってエンコードされたポリペプチドがハイブリッド遺伝子が発現されたとき生産される哺乳動物発現システムに関する。 他の観点において、この発明はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ． ２に示したアミノ酸配列からなるポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列からなり、かつさらにそのＤ ＮＡ配列の少なくとも１つのイントロン配列または変異型で、 １）ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ． １で示したＤＮＡ配列またはその特異部分で、好ましくは緊縮ハイブリッド形成条件下に、ハイブリッド化する、または ２）アミノ酸配列がＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ． ２で示したアミノ酸配列と少なくとも８５％相同じであるポリペプチドをエンコードする、または ３）前記ＤＮＡ配列の有効配列からなり、かつヒトＥＣ−ＳＯＤの生理活性を有するポリペプチドをエンコードするもの、からなるＤＮＡフラグメントに関する。 上記の緊縮ハイブリッド形成条件は、通常の意味に理解されるべきである。 すなわち、下記の実施例の“定義”の箇所で特定した方法を使用し、ハイブリッド形成を６７℃で２×ＳＳＣで行いかつ最終洗浄を６７℃で１×ＳＳＣで行う。 用語“相同”とは、所定のポリペプチドのアミノ酸配列とＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ ． ２に示したアミノ酸配列との同一性の程度を示すのに用いられる。 ＳＥＱ Ｉ Ｄ Ｎｏ． ２で示したアミノ酸配列と比較されるアミノ酸配列は、例えば上で定義したハイブリッド形成で得られたＤＮＡ配列から演繹でき、または通常のアミノ酸配列化法によって得ることができる。 相同の程度は、成熟ポリペプチドのアミノ酸配列で、すなわちリーダー配列を考慮することなく、決定するのが好ましい。 相同の程度は、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ． ２に示したアミノ酸配列と、少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９ ５％または９８％に等しいような少なくとも８５％であるのが好ましい。 上で用いた用語“有効サブシーケンス”とは、次に定義するようなヒトＥＣ− ＳＯＤの活性について官能的であるペプチドをエンコードするサブシーケンスに関する。 サブシーケンスは、ＤＮＡ配列の何れかの末端での切除または、ＤＮＡ 配列内の１以上のヌクレオチドの除去の結果であってもよい。 用語でヒトＥＣ−ＳＯＤの“生物活性”はＥＣ−ＳＯＤのスパーオキシド不均化活性（dismutating activity）と理解されるべきである。 サブシーケンスをエンコードしたペプチドは、ヒトＥＣ−ＳＯＤタイプＣのヘパリン親和性と比較して、類似、増大または減少のヘパリン親和性を有してもよい。 この明細書で、用語“ヒトＥＣ−ＳＯＤタイプＣのヘパリン親和性と比較して、類似、増大または減少のヘパリン親和性”とは、ペプチドが、組換えＥＣ−Ｓ ＯＤタイプＣの結合（この結合は下記実施例で記載のように生体外でＮａＣｌでの溶離で評価）と、生理条件下でヘパリンに同じか、強くなくまたはより強い結合を有することを示す。 ヘパリン親和性は、ヘパリンに結合したときのポリペプチドを溶離するに要するＮａＣｌの濃度で決められる。 なお他の観点が、この発明は、上に定義した哺乳動物発現系を、哺乳動物の受精卵または胚の細胞に、前記発現系を哺乳動物の生殖系列に導入するように、注射し、かつ得られる注射した受精卵または胚をメス成人哺乳動物に発育させることからなる、この発明の組換えポリペプチドを発現しうる形質転換非ヒトの哺乳動物の生産方法に関する。 形質転換細胞または動物は、そのゲノム内に１以上の導入遺伝子を含む。 導入遺伝子はゲノムの遺伝子座で組込まれたＤＮＡ配列で、さもなくば形質転換ＤＮ Ａ配列は、そのゲノムの遺伝子座が普通見出されない。 導入遺伝子は、異種ＤＮＡ配列（他の種のゲノムに普通見出される配列）または相同ＤＮＡ配列（同種のゲノムから誘導された配列）で作ることができる。 ここで使用した、“組換えポリペプチド（またはこれをエンコードする組換えＤＮＡ配列）は“異種ポリペプチド”である。異種ポリペプチドは、形質転換動物で通常生産されないポリペプチドである。 異種または相同ポリペプチドはそれぞれ、特異なアミノ酸・核酸配列で特性化される。しかし、このような配列は、天然に存在する対立遺伝子変異型および組換え法で生産した変異型を含むと理解されるべきで、そこでこのような核酸とポリペプチドの配列は、置換を生ずるように、その核酸配列中に１以上のヌクレオチドを置換、挿入及び／又は削除で修飾される。用語ＤＮＡを以下で使用するとき、ＤＮＡがＲＮＡで置換できる多数の目的のために、用語ＤＮＡは、当業者に明らかなＲＮＡ具体例を含むと読まれるべきと理解すべきである。 更なる観点で、この発明は、このようなＤＮＡ配列を担持し表現できる複製しうる発現ベクター、このようなベクターを有する細胞、ポリペプチドの生産方法、形質転換動物それ自体とこのような形質転換動物からのミルクに関する。 発明の詳細な記述 この発明による哺乳動物発現系は、ヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するＳＥ Ｑ ＩＤ Ｎｏ．２で示したアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその変異型をエンコードするＤＮＡ配列からなる発現系であることができ、そのＤＮＡ配列は、雑種遺伝子を宿る非ヒト哺乳動物の成人メスの乳腺で発現できる雑種遺伝子を形成し、ＤＮＡ配列をコード化したポリペプチドが雑種遺伝子が発現されたとき生産させるように、哺乳動物の乳蛋白をエンコードする遺伝子の調節要素と結合されている。 以下で詳述するように、この発明による発現系は、多目的に、そのＤＮＡ配列が少なくとも１つのイントロン配列を含みかつ好ましくは少なくとも１つの許容ＲＮＡスプライスシグナルを含む発現系が好ましい。 例えば、乳蛋白をエンコードする遺伝子は、乳漿酸性蛋白（ＷＡＰ）遺伝子、 β−ラクトグロブリン遺伝子またはカゼイン遺伝子から選択されたものであってよい。またこの発明は、このような雑種遺伝子からなる。 上記のように、発現系は、エンコードされたポリペプチドの変異型がＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．２に示したアミノ酸配列と少なくとも８５％相同であるものが好ましい。ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１に示したＤＮＡ配列と密接な構造関係を発現さす他の方法は、ハイブリッド化である。発現系は、そのポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列が、好ましくは実施例に記載のような緊縮ハイブリッド化条件下で、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１のＤＮＡ配列またはその一部でハイブリッド化するものであるようなものが好ましい。 興味なる具体例は、ヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列になるように、少なくとも１のつヌクレオチドが削除、置換または修飾され、または少なくとも１つの付加ヌクレオチドが挿入されている上記のＤＮＡ配列と異なる修飾ＤＮＡ配列からなる。 他の観点で、この発明は、ヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその変異型をエンコードするＤＮＡ配列で、その配列が少なくとも１つのイントロン配列からなるＤ ＮＡフラグメントに関する。 ＤＮＡ配列は、次のものが好ましい。 １）ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１で示したＤＮＡ配列またはその特異部分で、好ましくは緊縮ハイブリッド化条件下でハイブリッド化されたもの、または２）ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列と少なくとも８５％相同であるアミノ酸配列のポリペプチドをエンコードするもの、または３）そのＤＮＡ配列の有効配列を構成するもの。 他の具体例で、ＤＮＡフラグメントは、少なくとも１つの許容ＲＮＡスプライスシグナルを含有する。 好ましい具体例で、ＤＮＡフラグメントは、ＳＥＱ ＩＤＮｏ１に示したＤＮ Ａ配列から実質的に構成される。 または、ＤＮＡ配列は、上記したＤＮＡ配列と異なる修飾ＤＮＡ配列でもよく、修飾ＤＮＡ配列は少なくとも１つのヌクレオチドが削除、置換または修飾され、または、少なくとも１つの付加ヌクレオチドが挿入され、ヒトＥＣ−ＳＯＤのヘパリン親和性と比較して類似、増加あるいは減少しているヘパリン親和性を有するポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列になるものである。 例えば、変異型Ｔ２１６、Ｔ２１５、Ｔ２１３、Ｔ２０９、ＳＨＴ２１６、ＳＲＴ２１６、Ｓ Ａ２１９、ＳＡ２２０、ＳＡ２１１−２１３、ＳＡ２１６、ＳＡ２１６／２１８ とＳＡ２１６／２２０からなる群から選択された変異型である。 差異があるこれら変異型のＣ末端配列をＦｉｇ１と配列リストに示す。 この明細書で、用語“遺伝子”は、ポリペプチド鎖の産生に含まれかつコード化部位の前と後の部位（５'−上流と３'−下流配列）を含むＤＮＡ配列ならびに介在配列、個々のコード化セグメント間（所謂エキソン）または５'−上流部位または３'−下流部位に配置される所謂イントロンを示すのに用いられる。 ５ '上流部位は、遺伝子の発現をコントロールする調節配列、代表的にはプロモータからなる。 ３'−下流部位は、遺伝子の転写の終結に含まれる配列と、任意に転写と３'−末翻訳部位のポリアゼニル化に応答の配列とからなる。 上記の調節または発現調節配列は、転写のコントロールに加え、ＲＮＡ安定性とプロセシングに、少なくとも転写される程度に貢献する。 このような発現調節配列は、組換えＤＮＡの組織特異またはセルタイプ特異発現を生産すべく選択される。 組織またはセルタイプが発現に選択されると、５' と任意３'発現調節配列が選択される。 一般に、このような発現調節配列は、主に選択された組織またはセルタイプで発現される遺伝子から誘導される。 これらの発現調節配列が得られる遺伝子は、実質的に、選択された組織またはセルタイプでのみで発現されるのが好ましく、このような組織またはセルタイプ中の導入遺伝子での組換えＤＮＡの発現がトランスジエニック動物に有害でなければ他の組織および／またはセルタイプでの２次発現が許される。 特に好ましい発現調節配列は、扱われる動物の種に固有のものである。 しかし、ヒト遺伝子のもののような他の種の発現調節配列も使用できる。 ある場合には、発現調節配列と構造Ｄ ＮＡ配列（ゲノミックまたはｃＤＮＡ）は、同一種からで、例えばそれぞれウシ種またはヒト源からである。 この場合に、発現調節配列とＤＮＡ配列は互いに相同である。 代わりに、発現調節配列とＤＮＡ配列（ｃＤＮＡまたゲノミック）は、異なる種、例えばウシ種からの発現調節配列とヒト源からのＤＮＡから得られる。 この場合に、発現調節配列とＤＮＡ配列は互に異種である。 次に内因性遺伝子からの発現調節配列を定義する。 この定義は、非内因性異種遺伝子からの発現調節配列にも適用できる。 一般に５'発現調節配列は複製開始配列の上流に内因性遺伝子の転写部分（５ '未翻訳部位または５'ＵＴＲ）と官能性プロモータからなる上流でのフランキング配列を含む。 ここで用いた“官能性プロモータ”とは、転写を促進するためＲＮＡポリメラーゼの内因性遺伝子への結合を支配する必要な未転写ＤＮＡ配列のものを含む。 このような配列は、転写開始部位から一般に約２５〜３０ヌクレオチドにあるＴＡＴＡ配列またはボックスからなるのが代表的である。 ＴＡＴＡ 配列は時々、近位シグナルとも呼ばれる。 多くの場合に、プロモータは、さらに、転写を開始するのに必要である近位シグナル（ＴＡＴＡボックス）の上流に位置する１以上の遠位シグナルからなる。 このようなプロモータ配列は、一般に転写開始部位の上流にある最始の１００〜２００ペプチド内に含まれるが、転写開始部位から５００〜６００ヌクレオチドまでまたはそれ以上延びることができる。 このような配列は、当業者にとって容易に明らかであるが標準法で容易に同定できる。 このようなプロモータ配列単独または５'未翻訳領域との組合せで、ここで“近位５'発現調節配列”と呼ぶ。 かかる近位５'発現調節配列に加えて、付加５'フランキング配列（ここで遠位５'発現調節配列と呼ぶ）も導入遺伝子に含まれるのが好ましい。 このような遠位５'発現調節配列は、 内因性遺伝子の発現を促進する１以上のエンハンサーおよび／または他の配列を含有し、結果として、遠位と近位５'発現調節配列に作動的に結合される構造Ｄ ＮＡ配列の発現を促進するとみられる。 ５'発現調節配列は遺伝子発現の空間的かつ時間的分布を制御する。 遠位５'発現調節配列の量は、発現調節配列が誘導される内因性遺伝子による。 しかし、一般にこのような配列は、約１ｋｂのフランキング領域、より好ましくは１６ｋｂ最も好ましくは約３０ｋｂの５'フランキング配列からなる。 何れの特定の内因性遺伝子から使用される遠位５'発現調節配列の最適量の決定は、最適発現を得るのに遠位５'発現調節配列の量を変化させて容易に決められる。 一般に、遠位５'発現調節配列は、近位遺伝子に延びるほど大きくなく、導入遺伝子発現に逆効果をするＤＮＡ配列を含まないであろう。 加えて、３'発現調節配列は、組織または細胞タイプ特異発現を補うのにも含まれるのが好ましい。 このような３'発現調節配列は適切な内因性遺伝子からの３'近位と３'遠位発現調節配列を含む。 ３'近位発現調節配列は組換えＤＮＡ 配列の翻訳停止シグナルの下流に位置する転写しかし末翻訳ＤＮＡ（ここで３' 末翻訳領域または３'ＵＴＲと称す）を含む。 このような配列は、一般に、ポリアデニル化配列（内因性遺伝子またはＳＶ４０のような他の源からのもの）およびＲＮＡ安定性に影響しうる配列で終結する。 一般的に、３'ＵＴＲは３'調節配列が由来する遺伝子で翻訳停止シグナルの下流での約１００〜１０００ヌクレオチドからなる。 遠位３'発現調節配列は近位３'発現調節配列の下流のフランキングＤＮＡ配列を含む。 これらの遠位配列のいくつかは転写されるが、ｍＲＮＡの部分も形成せず、一方この３'遠位発現調節配列中の他の配列は全く転写されない。 このような遠位３'発現調節配列は発現を増強するエンハンサーおよび／または他の配列を含むと思われる。 このような配列は効率的なポリアデニル化に必要で転写終結配列を含むと思われる。 このような配列は、約２ｋｂより好ましくは８ｋｂ最も好ましくは約１５ｋｂの３ 'フランキング配列からなるのが好ましい。 ５'発現調節配列と３'発現調節配列の両方の使用が好ましいが、この発明のいくつかの具体例では、内因性３'調節配列は使用されない。 この場合、３'遠位発現調節配列を通常組換えＤＮＡ配列をエンコードしたゲノムＤＮＡと結合して直接ポリアゼニ化に使用される。 加えて、組換えポリペプチドをエンコードするゲノムＤＮＡからの遠位３'調節配列が、内生３'発現調節配列に用いられたと好ましくは同量で使用することもできる。 この場合に導入遺伝子をコードした組換えポリペプチドはゲノムＤＮＡまたはｃＤＮＡ由来の二本鎖ＤＮＡの何れかからなることがでてきると理解されるべきである。 ５'発現調節配列でと同様に、３'発現調節配列の最適量を、組換えポリペプチドの最大発現を得るため３' フランキング配列の量を変えることによい容易に決定できる。 一般に、遠位３' 調節配列は内因性遺伝子あるいは異種遺伝子からのものでもそれが由来する隣近遺伝子に延びず、導入遺伝子発現のレベルに逆作用する何れの配列も除外されるであろう。 ５'と３'発現調節配列と組換えＤＮＡ（ゲノミックまたはｃＤＮＡに由来の何れ）に加えて、この発明の導入遺伝子は、またその転写領域を切断するイントロン配列からなってもよい。 しかし、組換え切断配列は“ハイブリッド切断配列”からなってもよい。 このようなハイブリッド切断配列は、異種または相同源の切断配列からの５'ＲＮＡスプライスシグナルまたは３'ＲＮＡスプライスシグナルからなる。 許容ＲＮＡスプライスシグナル含有のこのようなハイブリッド切断配列は、組換えＤＮＡがｃＤＮＡ配列に相当するときに使用するのが好ましい。 上記に基づき、好ましい導入遺伝子は、５'と３'発現調節配列の大量を含むことが明白である。 さらに組換えＤＮＡは長さ１０位から１００位のキロベースであるゲノムクローンに由来するのが好ましい。 ＤＮＡのクローン化と処理の現在の技術に基づいて、導入遺伝子の構築と微注入は、約５０ｋｂより大きくない長さの線状化ＤＮＡに実際上制限される。しかしながら、この発明の導入遺伝子、特に約５０ｋｂ以上の長さを有するものは、所望の導入遺伝子の２以上の重複フラグメントを胚ターゲット細胞に導入することにより容易に発生できる。導入されると、重複フラグメントは相同組換を行い、ターゲット細胞のゲノムに完全に再構築された導入遺伝子の一体化をする。一般に、このような重複導入遺伝子は重複する領域で１００％相同を有するのが好ましい。しかし、低い配列相同性も、効率的相同組換が起これば認容できる。相同配列部分に非相同性が存在すれば、非相同性が、相同配列部分全体に広がらず、むしろ区別された領域に局在するのが好ましい。 １００％相同が１４塩基体であるような少なくとも哺乳動物細胞での相同組換えが十分であるが〔５５〕、より長い相同配列部分が、核相同配列部分に対し例えば２００ｂｐが好ましく、１００ｂｐがより好ましく、２００ｂｐが次位で最も好ましく、２０００ｂｐより大が最も好ましい。この発明の導入遺伝子がゲノムＤＮＡに由来または対応する組換えＤＮＡでエンコードされた組換えポリペチド（またはこのようなゲノム配列から実質的になる、例えばポリペプチドをエンコードするコドンの約５０％以上、より好ましくは７５％以上、最も好ましくは９０％がゲノム配列から）をエンコードするとき、形質転換乳中のモル濃度と蛋白レベルは、ｃＤＮＡと同じかまたは大である。一般に、このような形質転換乳中の組換えポリペプチドのモル濃度は、約５０Ｍ Ｍ以上が好ましく、約１５０ＭＭ以上がより好ましく、約５００ＭＭ以上が最も好ましい。ウシ形質転換乳中の前記モル濃度と蛋白レベルは、特定の組換えポリペプチドの分子量によって変動するであろう。形質転換乳中で組換えポリペプチドを生産する特別な利点は、比較的大きな分子量のポリペプチドが生産できることで、そうでないと原核生物の発現系のような他の系で大量に生産することは困難である。しかし、マウスは、乳のml当り５０〜８０mgの蛋白を生産し、ウサギは乳のml 当り約１００mgを生産する。一方ウシは、通常ml当り３０〜３４mgの蛋白を生産する。組換えポリペプチド産生が例外的に高いレベルであると内生乳蛋白の生産に逆に作用するおよび／または乳分泌線に逆作用するので、組換えポリペプチド濃度は、ウシの乳で生産される蛋白の通常量に対し約１〜５０％の間の通常乳蛋白濃度が好ましく、１０〜２０％の間がより好ましく、１０〜１５％の間が最も好ましい。このような好ましい範囲は、形質転換ウシ乳で生産される蛋白の上記レベルの好ましい最大限界ともなる。用語“遺伝子の有効サブシーケンス”はＤＮＡ配列に関しての上記の定義と同様に理解されるべきである。ハイブリッド化は、以下の実施例の“定義”の部分に記載のように、好ましくは、下記ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１に示してＤＮＡ配列のコード部分からなるプローブに基づいて行うことができる。用語“相同”と“有効サブシーケンス”は上記の定義と同様に用いられる。 ＤＮＡ配列の変異型をコード化したポリペプチドは、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列と少なくとも９０％相同で、例えは少なくとも９５％または９８％に等しい相同である。この発明のＤＮＡ配列の特別な変異型の例としては、特に形質転換動物での発現に適用されたＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１に示した完全ＤＮＡ配列または本質的部分からなるＤＮＡ配列である。このＤＮＡ配列は、適当な制御配列と共に発現系に挿入されると、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその変異型あるいはサブシーケンスの発現となるものである。上記のように、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１のＤＮＡ配列は、ヒトＥＣ−ＳＯＤの官能性ドメイン／ドメイン類からなるポリペプチドをコード化している。殆どの場合にシグナルペプチドの存在は、ＤＮＡ配列で発現されるポリペプチドを生産される細胞から輸送させる必須要件であるが、使用される特定のシグナルペプチドの性質と源は、変化してもよく天然でヒトＥＣ−ＳＯＤと結合したシグナルペプチドである必要はない。天然ヒトＥＣ−ＳＯＤは位置８９のアスパラギンでグリコシル化される。天然ＥＣ−ＳＯＤよりグリコシル化される多くの残基からなるＥＣ−ＳＯＤ変異型は、天然ＥＣ−ＳＯＤより高いヘパリン親和性を有すると考えられる。組換えポリペプチドのグリコシル化は、選択した発現系による。異なる種および／または組織源の真核細胞がグリコシル化機械で変動を示すことがよく知られている。従って、興味のあるグリコシル化修飾を行うには、適当な事後翻訳グリコシル化修飾を行う能力を有する組換え分子の生産用の宿主生物を選択するのが必須である。しかし、宿主生物のグリコシル化機械の修正を可能にする入手しうる方法がある。これは、宿主生物、例えば宿主細胞または形質転換動物のゲノムを、組換え遺伝要素を導入により変更してなすことができる。この遺伝要素は、付加的または修飾グリコシルトランスフェラーゼまたは他の関連酵素をコード化でき、かつその発現を仲介するかまたは内生グリコシルトランスフェラーゼまたの他の関連酵素の機能を阻害する。阻害は、内生グリコシルトランスフェラーゼ遺伝子機能を破壊するか、または、内生グリコシルトランスフェラーゼｍＲＮＡ種に相補的であるＲ ＮＡ配列をエンコードするベクターの導入により達することができ、これによりアンチセンスＲＮＡとして機能する。修飾ＤＮＡ配列をコード化したポリペプチドは通常、ヒトＥＣ−ＳＯＤのアミノ酸配列と異なるアミノ酸配列を持つ。 “置換”が行われると、完全ヌクレオチド配列の１以上のヌクレオチドが１以上の異なるヌクレオチドで置き換えられ、“付加”が行われると、１以上のヌクレオチドが、完全ヌクレオチド配列の何れかの末端に付加され、“挿入”が行われると完全ヌクレオチド配列内に１以上のヌクレオチドが挿入され、かつ“削除”が行われるとき、１以上のヌクレオチドが、完全ヌクレオチド配列からその何れかの末端または適切な点での何れかで除去される。修飾ＤＮＡは、周知の方法、例えば部位指向突然変異誘発によって得ることができる。この発明の重要な修飾ＤＮＡ配列の例は、グリコシル化される残基の数が増加したペプチドをエンコードしている修飾ＤＮＡ配列になるように、アスパラギン残基をエンコードしている付加コードンが挿入されたＤＮＡ配列である。付加残基は、この発明のＤＮＡ配列の末端またはその中の何れかに付加されるか、またはこの発明のＤＮＡ配列に存在する１以上の非アスパラギンコードンを置換することにより挿入しうる。このような修飾配列がコード化されたポリペプチドは高度のグリコシル化を有すると考えられる。興味ある修飾ＤＮＡ配列の他の例は、組換えＥＣ−ＳＯＤタイプＣに比して、 ヘパリン親和生が減少したＥＣ−ＳＯＤの変異型をコード化しているＤＮＡ配列である。この変異型は、変異型Ｔ２１６、Ｔ２１５、Ｔ２１３、Ｔ２０９、ＳＡ Ｔ２１６、ＳＲＴ２１６、ＳＡ２１９、ＳＡ２２０とＳＡ２１１−２１３からなる群より選択されたものである（Ｆｉｇ１と配列リスト参照その中でＳＥＱ Ｉ Ｄ Ｎｏ８−１５、１８−２３と２８−３１がこれら変異型のＣ−末端配列を示す）。興味ある修飾ＤＮＡ配列の更なる例は、組換えＥＣ−ＳＯＤタイプＣに比して、ヘパリン親和性が増大したＥＣ−ＳＯＤの変異型をエンコードするＤＮＡ配列である。この変異型は、変異型ＳＡ２１６、ＳＡ２１６／２１８とＳＡ２１６／ ２２０からなる群より選択されたものである。これら変異型のＣ−末端配列は、 それぞれＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ． １６−１７、２４−２５および２６−２７として示される。修飾ＤＮＡ配列を作る目的に、部位指向突然変異誘発は、関連アミノ酸残基の変換／除去を与える特異オリゴヌクレオチドプローブを用いて行うことができる。ここで説明の発明の哺乳動物発現系で用いられるＤＮＡ配列は、天然ＤＮＡ配列ならびに合成ＤＮＡ配列であってもよく、 天然配列の代表的なものは、例えば下記のごとく、通常、哺乳動物源のｃＤＮＡ またはゲノムＤＮＡから直接誘導される。合成配列は、ＤＮＡ分子を合成で作る常法で作ることができる。 ＤＮＡ配列は、混合したｃＤＮＡとゲノムＤＮＡ、混合したＣＤＮＡと合成ｃＤＮＡ、混合したゲノムＤＮＡと合成ＤＮＡ源であってもよいことは勿論である。 ＲＮＡ配列も上記のように使用できる。この発明により配列、サブシーケンス、変異型およびポリペプチドに関して使用した用語“配列”、“サブシーケンス”、“変異型”と“ポリペプチド”は、 これらの天然環境でのこれらの現象からなるものではなく、例えば分離した、精製した、生体内または組換えの形でのフラグメントとして勿論理解さるべきである。この発明のＤＮＡ配列に言及するとき、これらは、上で定義した“変異型” 、“サブシーケンス”と“修飾配列”を含むと解すべきである。用語“サブシーケンス”は、例えばＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１または２に示した配列の１部として、 この明細書で、より長い配列の１部として理解すべきである。同様に、この発明の“ポリペプチド”に言及するとき、ここに定義のポリペプチドの何れも含むと理解すべきであろう。更なる観点で、この発明は、ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列の発現を担持しかつ仲介しうる複製性発現ベクターに関する。この明細書で、用語“複製性”とは、所定タイプの宿主細胞に導入されたとき複製しうることを意味する。ヒトＥＣ−ＳＯＤＤＮＡ配列のすぐ上流に、シグナルペプチドをコードする配列を与えることができ、この存在は、ベクターを有する宿主細胞で発現されるヒトＥＣ−ＳＯＤの分泌を保障する。シグナル配列は、ヒトＥＣ−Ｓ ＯＤ ＤＮＡ配列を天然に結合したものまたは他の源でもよい。ベクターは、組換えＤＮＡ法に簡便に付すことができる何れのベクターでもよく、ベクターの選択は、それを導入する宿主細胞によることが多い。かくして、 ベクターは、自己複製ベクター、すなわち、染色体外物として存在するベクターでよく、その複製は、染色体複製と独立である。このようなベクターの例は、プラスミド、ファージ、コスミド、ミニ染色体あるいはウィルスである。代りに、 ベクターは、宿主細胞に導入されたとき、宿主細胞ゲノムに組込まれ、組込まれた染色体（類）と共に複製されるものでよい。この発明のベクターは、上で定義のこの発明のＤＮＡ配列の何れも担持でき、 上で定義のこの発明のポリペプチドの何れかの発現に使用できる。従ってこの発明はまた、ブタペスト条約の規定により受理番号ＤＳＭ８３３５ として、ＤＳＭ（Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen G mbH）のコレクションに１９９３年６月７日に寄託されたｐｓ１７２として表示の複製性発現ベクター、およびその寄託した発現ベクターのＤＮＡ配列とは異なるが、ヒトＥＣ−ＳＯＤの生物学活性ならびに上で定義の複製性発現を有する同じポリペプチドまたはその変異型をコードしているＤＮＡ配列を発現する発現ベクターに関する。ここで、発現されたＤＮＡ配列は、寄託ベクターのＤＮＡ配列と異なり、ＥＣ− ＳＯＤの生物学活性を有するポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列になるように、少なくとも１つのヌクレオチドが削除、置換または修飾され、または少なくとも１つのヌクレオチドが挿入されているものである。この発明はさらに、上で定義の複製性発現ベクターを宿す細胞に関する。この細胞は、原則的に、何れのタイプの細胞でもよく、すなわち、細菌例えばＥ．コリのような原核細胞、単細胞性真核生物、真菌または酵母例えばサッカロマイセス・セレビシエ、または多細胞性生物例えば哺乳動物からの細胞がある。哺乳動物細胞は、この発明の目的と特に適し、さらに以下で述べる。他の主要な観点において、この発明は、上でも規定したごとき少なくとも１つの発現系を非ヒト哺乳動物ゲノムに、そのポリペプチドをエンコードするＤＮＡ を非ヒト哺乳動物の乳腺で発現されるように導入し、乳腺から分泌された乳を採取し、乳から組換えポリペプチドを回収し、かつ任意に精製することからなる組換えヒトＥＣ−ＳＯＤの生産方法に関する。適当なベクターは、上記のベクターの何れでもよく、かつ適当な宿主細胞は、上でリストした細胞タイプの何れでもよい。ベクターを構築しそれを宿主細胞に導入させるのに用いる方法は、組換えＤＮＡの分野でこのような目的に知られた何れの方法でもよい。 １つの具体例では、発現系またはそのサブシーケンスの１〜１０コピーが注射され、他の具体例では発現系またはそのサブシーケンスの１〜７コピーが注射される。発現系またはそのサブシーケンスのコピーは、同一でも、また少なくとも２つの異なるＥＣ−ＳＯＤの変異型の発現になり乳中でＥＣ−ＳＯＤの異種テトラマーになる異なるＤＮＡ配列からなってもよい。変異型は、同じヘパリン親和性を有してもまたはヘパリン親和性を異にしてもよい。ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列が、分泌されるために、シグナルペプチドをエンコードする配列が先行されるべきで、その存在は細胞からのヒトＥＣ−ＳＯＤの分泌を保障し、従って少なくとも有意な割合のヒトＥＣ−ＳＯ Ｄが分泌されかつ回収できる。発現の組織としての乳腺と乳蛋白をエンコードする遺伝子は、乳蛋白が元来乳腺で高い発現レベルで生産されるので、形質転換非ヒト哺乳動物で異種蛋白を生産するのに特に適するものと一般に考えられる。また乳は容易に採取でき、大量に入手しうる。この明細書で、用語“ハイブリッド遺伝子”は、一方で上で定義のヒトＥＣ− ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列を他方、ハイブリッド遺伝子産物の発現を仲介しうる乳蛋白遺伝子のＤＮＡ配列からなるＤＮＡ配列を示す。用語“乳蛋白をエンコードする遺伝子”または“乳蛋白遺伝子”は、ハイブリッド遺伝子の発現を興味の組織、すなわち乳腺に仲介し標的しうる全遺伝子ならびにその有効サブシーケンスを示す。乳蛋白遺伝子は、β−ラクトグロブリン、α−ラクトアルブミンまたはカゼインの遺伝子でもよく、しかし乳漿酸蛋白遺伝子が特に好ましい。通常、有効サブシーケンスは、プロモータ領域、転写開始部位、３'と５'非コード化領域と構造配列の１つまたはそれ以上を少なくとも有するものである。ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列は、例えばそのクローニング後にＤＮＡ配列と結合できるベクター配列のような、原核配列が実質的にないのが好ましい。ハイブリッド遺伝子は、生体内で、ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ 配列を、当該分野で公知の技術を用いて、乳蛋白遺伝子に挿入して形成されるのが好ましい。または、ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡは、相同組換えで生体外で挿入できる。ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列は、通常、選択の乳蛋白遺伝子の第１エクソンの１つ、または第１エクソンかつ好ましくは調節で重要であると思われる５'フランキング配列の実質的部分からなる有効配列に挿入されるであろう。ハイブリッド遺伝子は、ハイブリッド遺伝子産物が正しく乳腺に分泌されるようにシグナルペプチドからなるのが好ましい。シグナルペプチドは、問題の乳蛋白遺伝子またはヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列と結合したものに普通に見出されるものが代表的である。しかしハイブリッド遺伝子産物を乳腺への分泌を仲介しうる他のシグナル配列も関連する。勿論、ハイブリッド遺伝子の各種要素は、遺伝子産物の正しい発現とプロセシングをさせるように融合されるべきである。かくして、 普通、選択のシグナルペプチドをエンコードするＤＮＡ配列は、ヒトＥＣ−ＳＯ ＤをエンコードするＤＮＡ配列のＮ−末端部に正確に融合されるべきである。ハイブリンド遺伝子で、ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列は、通常、 その停止コドンからなり、それ自身のメッセージクリアランスとポリアデニル化部位がない。ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列の下流に、乳蛋白遺伝子のｍＲＮＡプロセッシング配列が通常保持されるであろう。多くの因子が、特定のハイブリッド遺伝子の実際の発現レベルに感応するとみられる。プロモータならびに上記の他の調節配列の能力、哺乳動物のゲノムでの発現系の統合部位、ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列の統合部位、 ポスト転写調節をする要素や他の類の因子は、得られる発現レベルに致命的な重要であろう。ハイブリッド遺伝子の発現レベルに影響する各種の因子についての知識を基にし、当業者であれば、この目的に有用な発現系をどのようにデザインするか知れるところである。使用される乳蛋白遺伝子は、発現系が挿入されるものと同じ種から誘導でき、 また他の種から誘導できる。これに関連して、遺伝子発現を乳腺に標的する調節要素は種境界の全域（across）で官能的である（これは恐らく共通の祖先によるものであろう）〔３５〕。この発明の発現系の構築に使用される乳蛋白またはその有効サブシーケンスをエンコードする適切な遺伝子の例は、ネズミ源が好ましい乳漿酸性蛋白（ＷＡＰ）遺伝子、ヒツジ源が好ましいβ−ラクトグロブリン遺伝子のような各種哺乳動物源の乳漿蛋白から通常見出される。また、 各種の源からのカゼイン遺伝子は、ウシａＳＩ−カゼインやウサギβ−カゼインのようなヒトＥＣ−ＳＯＤの形質転換生産に適当であることが見出される。現在好ましい遺伝子は、ネズミＷＡＰ遺伝子で、これは、異なる形質転換動物の乳で多数の外的ヒト蛋白の高いレベルの発現を与えうることが見出されているからである〔３５〕。この発明の発現系に関連した好ましい他の配列は、高レベル発現を仲介しうる所謂発現安定化配列である。このような安定化配列は、乳蛋白遺伝子のあたりと上流に見出される強力な指摘がある。この発明の発現系に挿入されるヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列は、ｃＤＮＡ、ゲノムまたは合成源またはこれらの組合せのものでありうる。いくつかの発現系は、望ましい蛋白がをエンコードするｃＤＮＡ用いられたとき最良に機能することが見出されている一方、他は、十分な発現を得るのはイントロンと他の調節領域の存在を必要とすることが分かっている〔３５〕。ある場合には、ｃＤＮＡ要素と比較して、ゲノム構造をベクター構成物に導入するのが有利であろう〔５６〕。イントロンとエクソン構造は、ｃＤＮＡベースベクターが用いられたとき得られるものより高い定常状態のｍＲＮＡレベルとなる。この明細書で、用語“イントロン”は何れの天然イントロンの全部またはその部分を含むものである。さらなる観点において、この発明は、ハイブリッド遺伝子を宿す成人雌の非ヒト哺乳動物の乳腺で発現できるように乳蛋白遺伝子にＤＮＡ配列が挿入されている、哺乳動物の乳蛋白遺伝子をエンコードする遺伝子に挿入されたヒトＥＣ−Ｓ ＯＤをエンコードするＤＮＡ配列からなるハイブリッド遺伝子に関する。このハイブリッド遺伝子とその構成成分は上で詳述した。ハイブリッド遺伝子は、上記のようにこの発明の発現系の構築における重要な中間体である。他の観点によれば、この発明は、上で規定した発現系を宿す非ヒト哺乳動物細胞に関する。哺乳動物細胞は、胚細胞または前核であるのが好ましい。発現系は、以下に説明する方法を用いて哺乳動物細胞に適切に挿入される。さらに重要な観点によれば、この発明は、上で規定した発明の発現系を受精卵または哺乳動物の胚の細胞に、発現系を哺乳動物の生殖細胞系に導入するように注射し、得られる注射した受精卵または胚を成人雌哺乳動物に発育させることからなるヒトＥＣ−ＳＯＤを発現しうる形質転換非ヒト哺乳動物の生産方法に関する。この発明の“非ヒト哺乳動物”は“望ましい発現型”を有する形質転換非ヒト哺乳動物を生産できる全ての非ヒト哺乳動物からなる。これには、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、ネズミ種、ウシ種、イヌ種などを含む。形質転換非ヒト哺乳動物の望ましい発現型は、雌形質転換非ヒト哺乳動物の乳での組換えポリペプチドの生産を含むがこれに限定されない。この発明の形質転換非ヒト哺乳動物は、“導入遺伝子”を選択の動物の胚性ターゲット細胞に導入することにより生産される。発明の１つの観点では、導入遺伝子は、形質転換非ヒト哺乳動物の細胞のゲノムに含有したとき所望の発現型を生産しうるＤＮＡ配列である。特別の具体例では、導入遺伝子は、“組換えポリペプチド”をエンコードする“組換えＤＮＡ配列”からなる。この場合に、導入遺伝子は、組換えポリペプチドを生産すべく発現されうるものである。哺乳動物の生殖細胞系への発現系の導入は、適当な技術、例えば〔４１〕またはＷＯ９１／０８２１６に記載に従って行うことができる。胚性ターゲット細胞への導入遺伝子の導入または導入遺伝子フラグメントの重複の方法には、非ヒト哺乳動物の生殖卵母細胞の前核またはＥＳ細胞の核に導入遺伝子をマイクロ注射するのが含まれる。ネズミ種へのこのような方法は、当業者に周知である。または、導入遺伝子は、接合子を、導入遺伝子含有のレトロウイルスで感染させて動物に導入できる〔５７〕。好ましい方法は生殖卵母細胞のマイクロ注射である。この好ましい具体例で、生殖卵母細胞は、最初に、標準技術によってマイクロ注射される。その後、“前着床胚”が得られるまでインビトロで培養される。このような前着床胚は、約１６〜１５０細胞を含むのが好ましい。胚の１６〜３２セル段階は通常桑実胚と称される。 ３２細胞以上を含有する前着床胚は通常胚盤胞と称せられる。これらは、代表的に６４セル段階で胞胚腔の発達を示すものとして一般に特徴付けられる。生殖卵母細胞を前着床段階に培養する方法は、Ｇｏｒｄｏｎら〔５８〕、Ｈ ｏｇａｎら〔４１〕（マウス胚に対）、Ｈａｍｍｅｒら〔５９〕（ウサギとブタの胚に対し）、Ｇａｎｄｏｌｆｉら〔６０〕、Ｒｅｘｒｏａｄら〔６１〕（ヒツジ胚に対）、Ｅｙｅｓｔｏｎｅら〔６２〕、Ｃａｍｏｕｓら〔６３〕とＨｅｙｍ ａｎら〔６４〕（ウシ胚に対し）に記載のものを含む。このような前着床胚は、 その後、標準法で適当なメスに着床され、導入遺伝子が導入されたとき発達の段階により形質転換またはキメラ動物の誕生となる。周知のように、モザイク動物は、真の生殖細胞系形質転換動物を作るのに飼育できる。導入遺伝子の導入の頻度は低いことが多いので、前着床胚での導入遺伝子組込みの検出が非常に望まれる。この発明の１つの観点で、トランスジェノシスが起こり、形質転換胚の移植を許容して、形質転換動物を形成する胚を同定する方法を提供する。この方法で、前着床胚から１以上の細胞が除去される。等分割が用いられたとき、胚は、桑実胚段階（３２細胞）以上に培養されないのが好ましい。プレ移植胚の分割（Ｗｉｌｌｉａｍｓら〔６５〕により概説）は、２つの“半胚”（半桑実胚または半胚盤胞）になり、その内の１つは、適当なメスに内植後にさらに発育でき子宮で終末まで発達する。前着床胚の等分割が好ましいが、このような胚は、必ずしも等しいセル数ではない２つの半胚に意図的または非意図的に不均等に分割できる。本質的に、要求される全ては、以後に記載のように分析されない胚の１つが、子宮で完全な終末に発達するのに十分なセル数であることである。特殊な具体例では、トランスゲニックであると示されれば、以後に記載のように分析されない半胚は、形質転換非ヒト動物のクローン集団を発生するのに用いられる。前着床胚の分割で形成された半胚のそれぞれの１つは、導入遺伝子が生物のゲノムに組み込まれたかどうかを決定するために分析される。他の半胚の各々は、 種の受容雌への次いての着床用に保持される。組込み導入遺伝子を含む前着床胚は、半胚の各々の１つからのＤＮＡを分析して早期同定がされる。このＤＮＡは、半胚を融解し、放出ＤＮＡを分析するのが代表的である。ポリメラーゼ連鎮反応が導入遺伝子の全部または一部を増幅するのに行われる。全体の導入遺伝子が増幅されたとき、導入遺伝子の対向末端での対向ストランドを各々相補する２つのエックステンションプライマーが増幅に使用される。一般に、半胚からの増幅ＤＮＡは電気泳動に付し、２つのエックステンションプライマー間の導入遺伝子の領域を相補するラベル化プローブでハイブリッド化される。これは、増幅ＤＮＡ配列があれはその大きさの測定を促進し、 導入遺伝子が前着床胚に組込まれ半胚が得られた（ここで“形質転換半胚”と称す）かどうかを示す。それがあれは、残る未処理形質転換半胚は受容親に着床される。子宮で発達後に、組込み導入遺伝子を授けられた所望の発現型を有する形質転換非ヒト動物は、子宮中または出生後に適当な方法で同定される。上記の前着床胚でのトランスジェノシスの検出方法は、形質転換非ヒト動物を作る経済的で時間節約となる方法である。これは、形質転換動物を作るのに必要とされる妊娠数を有意に減少し、着床胚が形質転換非ヒト動物で作る可能性を有意に増大するからである。このような方法は、トランスジェノシスのごく低いかまたは存在しない頻度が得られた動物、例えばウシ種に特に重要である。他の具体例では、前着床胚でトランスジェノシスを検出する上記の方法は、胚クロニング工程と組合させて形質転換胚のクローン集団を発生させ、その後これを受容雌に着床させて同じ遺伝子型をも有する形質転換非ヒト動物のクローン集団を作る。これに関して、同じ“遺伝子型”を有する形質転換胚および／または非ヒト形質転換動物は、ゲノムＤＮＡか胚および／または形質転換動物集団の個体内で実質的に同一であることを意味すると理解さるべきである。しかし、有糸分裂の間に各種の体細胞突然変異が起って、１以上の細胞および／または動物の遺伝子型に変化を生ずることがある。かくして、同じ遺伝子型をする集団は、個体または副集団変動を例証できる。半胚が形質転換半胚として同定された後でクローン化される。このような胚クローニングは、いくつかの異なるアプローチで行うことができる。 １つのクローニング法では、形質転換半胚は、卵母細胞を前着床段階に培養するのに用いられたと同じか類似の培地で培養される。ここで精製した“形質転換胚”（好ましくは形質転換桑実胚）を次いで“形質転換半胚”に分別し、これを受容雌に着床させて２つの形質転換非ヒト動物のクローン集団を形成する。または、得られた２つの形質転換半胚を再び前着床段階に培養し、分別し次いで形質転換胚段階に再培養できる。この方法は、同じ遺伝子型を有する所望数のクローン形質転換胚が得られるまで繰り返される。次いで、この形質転換胚を受容雌に着床させ、形質転換非ヒト動物のクローン集団を作る。好ましいクローン化法では、形質転換胚をＰｒａｔｈｅｒら〔６６〕、Ｒｏｂ ｌｅら〔６７〕の技術による核移送てクローン化される。この方法によれば、形質転換胚の核は除去卵母細胞に着床され、その後各々を胚盤胞段階に培養する。この点で形質転換胚は核着床により他のラウンドのクローニングに再び付すか、 同じ遺伝子型を有する形質転換子孫の生産用の受容親に移送できる。上記の早期にトランスジェノシスを検出する方法に加えて、トランスジェノシスを検出する他の方法を使用できる。それには、組織の子宮内および分娩後分析がある。その１つは、羊水腔の経膣穿刺をエコースコープ案内下に行われる〔６ ８，６９〕。これは、妊娠の約３５日と１００日の間に羊水の約１５〜１５ｍｌ を回収するのが含まれる。この量の羊水は、尿生殖路、皮膚および恐らく発達胚の肺からのｍｌ当り約１，０００〜１２，０００の細胞を含む。これらの細胞の殆どは死亡している。しかし、このような細胞は、ゲノムＤＮＡを含み、これはトランスジェノシスが成功している指標として導入遺伝子のＰＣＲ分析に付される。または、胎児細胞を漿膜穿剌で回収できる。この方法は経膣的またはエコースコープ案内下でも行うことができる。上の方法で、針が受容動物の胎盤特に膣壁に固定されている膣構造に穿刺するのに用いられる。このサンプリングはウシ種の妊娠の６０ 日頃に行うことができる。漿膜細胞は必要により妊婦組織から分離し、トランスジェノシスの成功の指標として導入遺伝子のＰＣＲ分析に付される。トランスジェノシスはまた出生後に検出できる。この場合に、導入遺伝子の組込みは、推定形質転換動物の耳または尾からのように適当な組織の生体検査で検出できる。尾の約１〜２ｃｍまたは耳の５〜１０ｍｍ ²をとり、〔４２〕の方法により導入遺伝子のプローブでサザンブロッティングを行う。通常、注射した卵の全ては、ヒトＥＣ−ＳＯＤを発現しうる形質転換動物に発達しない。形質転換ファウンダー動物は、例えば実施例２で記載のように同定できる。約半分の哺乳動物は統計学観点から雄であろう。同定した形質転換個体− 雄と雌に基づき、子孫を確立し、形質転換動物の安定系が確立できる。生殖系に一旦組込ませると、ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列は高レベルに発現でき正しくプロセスされ官能的なヒトＥＣ−ＳＯＤを生産する。組換えペプチドが採取できる形質転換雌は次の世代に飼育できる。さらなる観点で、この発明は上記のごとき方法により作られた形質転換非ヒト哺乳動物に関する。形質転換細胞と動物を作るのに用いられるＤＮＡは、ｃＤＮＡよりむしろゲノムＤＮＡからなるのが好ましい。これは導入遺伝子の発現が組織特異発現ならびに一時特異発現に制限されるのが好ましいからである。導入遺伝子がゲノムＤＮ Ａから由来のとき、イントロンまたは構造遺伝子から離れた領域の何れかに位置するエンハンサーや他の調節要素のような重要なシス作用調節配列を含むことができる。このような調節配列は転写とＲＮＡプロセッシング中消失し、従って一般にｃＤＮＡ由来導入遺伝子が得られない。更なる観点で、この発明は、上記の方法によって作られる形質転換非ヒト哺乳動物に関する。最も広い観点での発明の形質転換非ヒト哺乳動物は特定のタイプの哺乳動物に限定されないが、哺乳動物は、ウサギ、マウス、ラット、羊、豚、山羊、ラマ、 ラクダとウシからなる群から通常選択される。ヒトＥＣ−ＳＯＤの大規模生産には、羊、山羊、豚、特にウシのような大きな動物は、乳生産が高いので通常好ましい。しかし、マウス、ウサギとラットは、これらの動物の操作がより簡単で、 例えはウシより、より早く形質転換動物となることから興味がある。ヒトＥＣ− ＳＯＤを生産できる上で定義した形質転換哺乳動物の子孫もこの発明の範囲内にある。上記の説明から、この発明が始めて、ヒトＥＣ−ＳＯＤからなる非ヒト哺乳動物から乳を生産することを可能し、その重要性と有用性が明細書で明らかになることが明白であろう。かくして、この発明の更なる観点では、組換えＥＣ−ＳＯＤからなる非ヒト哺乳動物からの乳を含む。特に興味があるのは、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列からなるこの発明のポリペプチド、または上で定義のごときＤＮＡ配列またはその変異体もしくはサブシーケンスをエンコードしたポリペプチドからなる非ヒト哺乳動物の乳である。この発明の乳は、上で定義の発明の形質転換哺乳動物から得るのが代表的である。他の観点で、この発明は、上で定義の発明の形質転換非ヒト哺乳動物から乳を採取し、その乳からヒトＥＣ−ＳＯＤを回収することからなるヒトＥＣ−ＳＯＤ を得る方法に関する。この乳は、問題の哺乳動物から乳を採取するのに関して通常用いられる何れの適当なやり方で集めることができる。天然ＥＣ−ＳＯＤのスーパーオキシド不均化性質を有する発明のポリペプチドは、スーパーオキシド基およびこの基から誘導された他の毒性の酸素中間体の存在または生成に関連した疾患または障害の診断、予防または治療に使用できる。このような疾患または障害の例は、レパーフュジョン（reperfusion）を併った虚血例えば心臓、腎臓、脳、脊椎の梗塞のような梗塞；心臓、肺、膵臓、肝臓、皮膚、骨組織、切断四肢、骨格筋のような器官の移植；リウマチ性関節炎、膵炎、特に急性膵炎、腎孟腎炎、他のタイプの腎炎のような炎症疾患、および肝炎、神経炎、葡萄膜炎、膀胱炎、ペーロニ病、自己免疫病、インシュリン依存糖尿病、散在性脈管凝固、脂肪塞栓症、出血性ショック、エンドトキシン誘因ショック、敗血症、重篤なウイルス感染症、成人呼吸困難、幼児呼吸困難、新生時の脳出血、火傷、移植に関連してのレンズと角膜の保存、イオン照射の副作用、発癌現象、およびアロキサン、パラクアットのようなトキシン及び細胞増殖抑制化合物の副作用から選ばれる。かくしてこの発明のポリペプチドは治療活性が下記でより完全に述べられるＣ ｕＺＮ ＳＯＤと実質的に同じ適用を有する。しかし、この発明のＥＣ−ＳＯＤ とその変異型は、治療への適用に特にこれらが有用とみられる多数の特性を有することが見出されている。 ＣｕＺｎ ＳＯＤは、腎臓の糸球体濾過で非常に速やかに除去される原因となる低分子量（３３，０００）であり、そのためゲッ歯動物で、１０分以下の血漿半減期を有し、ヒトではその酵素は約２０〜３０分の半減期を有する。 ＥＣ−Ｓ ＯＤ−Ｃ〔１５〕とＥＣ−ＳＯＤ変異型は、より長い半減期を有する。これは部分的に糸球体濾過での除去を防止するＥＣ−ＳＯＤの高い分子量によりかつ部分的にＣ−タイプのヘパリン親和性を有するＥＣ−ＳＯＤとＥＣ−ＳＯＤ変異型が内皮細胞表面に結合するとみられる事実によるものである。従って、この発明によるＥＣ−ＳＯＤとその変異型の治療的用途で、酵素は、少なくとも４時間できればもっと長いヒトでの半減期を有するのが好ましい。上記のように、ＥＣ−ＳＯＤは、その天然環境下で分泌蛋白であり、そのため、細胞外腔中（細胞外液中または細胞表面上）での機能のために特に合成されたものとみられ、このものは、スーパーオキサイドラジカルまたは他の酵素基の毒性効果に対し血漿成分または細胞の外面を保護するのに特によく適応する性質を奏することになる、ＥＣ−ＳＯＤＣ、および恐らく組換えＥＣ−ＳＯＤＣ、例えば変異型Ｔ２１６のヘパリン親和性に比較して僅かにヘパリン親和性が減少したポリペプチドの基本的性質とは、ヘパリン硫酸塩に対する親和性であり、これは生体内で細胞表面の多糖外皮と間在結合組織マトリクスでのヘパリン スルファート プロテオグリカンへの結合の相関現象を明らかに有する。この性質は、外部スーパーオキサイドラジカル源に対して細胞と組織を保護するのに特に効果的方法であるとみられる。 ＥＣ−ＳＯＤおよびＥＣ−ＳＯＤ変異型と細胞膜との明白な会合の意義は、細胞膜に結合さすためポリジンで修飾されたＣｕＺｎ ＳＯＤが、負に電荷し、従って細胞膜で抵抗される傾向にある通常のＣｕＺｎ ＳＯＤより活性化（スーパーオキサイド基ラジカル生成）多形白血球を自己不活化（細胞死）からより良好に保持しうるという知見で更に支持される。ノカルディア アステロイド（Noca rdia asteroides）は、ノカルディアのＰＭＮに対する感受性がこのＳＯＤに対する抗体を処理すると有意に増加することから、活性化ヒトＰＭＮに対する有効な防御をするとみられる膜−会合ＳＯＤを有する事実は、細胞表面に結合したＳ ＯＤの細胞膜保護機能を示すものである。 ＥＣ−ＳＯＤとＥＣ−ＳＯＤ変異型とは異なり、ＣｕＺｎ ＳＯ Ｄはすなわちスパーオキサイドラジカルの細胞外存在に誘因されて細胞外応用にあまり適さなくする細胞内機能を有する。その上、上記したＥＣ−ＳＯＤとＥＣ −ＳＯＤ変異型の半減期に比較して短い半減期が、この発明のＥＣ−ＳＯＤ変異型でのありそうな場合より、より短いインターバルでより多量を投与する必要があるとみられる。非経口的に投与したＣｕＺｎ ＳＯＤは、一連の炎症の動物モデルならびに動物での炎症で抗炎症効果を奏することが分った。ヒトでは、ＣｕＺｎ ＳＯＤの陽性の効果が、リウマチ性関節炎と関節病、膀胱の炎症と他の泌尿状態で報告されている。非経口的に投与したＣｕＺｎ ＳＯＤは細胞で吸収されず、細胞外腔でその活性を奏する必要がある。リポゾームにカプセル化したＣｕＺｎ ＳＯＤは細胞に取込まれ、クローン病、ベーチェット病、疱疹状皮膚炎、潰瘍性大腸炎、川崎病や放射線治療の副作用に有効であることが報告されている。 ＣｕＺｎ ＳＯＤの抗炎症活性の機序は全く明らかでない。活性化白血球で形成された酵素基に対する直接的な保護が示唆されている。化学走性物質で強く誘因されたスーパーオキサイドの生成の防止が他の可能性である。 ＳＯＤの他の大きな潜在的な応用領域は、虚血に原因した組織障害に対する防御因子としてである。血液の組織への供給が止められると、組織は徐々に壊死となろう。肉眼的にかつ顕微鏡的にみて障害はゆっくり何時間もかけて発達するのが代表的である。組織が例えば１時間後に再還流されると、改善に代って組織障害が強く促進されるであろう。この所謂再還流パラドックにいくつかの理由がありそうであるが、先の虚血組織での酵素の再出現の結果として生成した酸素ラジカルが障害に寄与するとみられる。このラジカルは非常に短命であるため直接的に研究することはむつかしく、かつその生成と効果に関する情報の多くは、各種の酵素ラジカルスカベンジャーの保護作用から推論される。しかし、これらの生成は、心臓サンプルについてＥＰＲの手段によってより直接的に例証されてきた。 ＣｕＺ ｎ ＳＯＤによる組織保護は、腎臓での虚血または無酸素再還流モデルで例証されている。 ＥＣ−ＳＯＤとその変異型は、ストレプトキナーゼ、組織プラスミノーゲンアクチバーター、ウロキナーゼ及びその変異型及びこれらの因子の変異型のような血栓崩解剤に関連して使用できると考えられる。この情報での酵素ラジカル源は完全に明らかではないが、アロプリノールの効果は、虚血によってキサンチンオキシダーゼのキサンチンデヒドロゲナーゼ型からラジカル産生オキシダーゼ型に変換されるキサンチンオキシダーゼによって一部原因することを示すとみられる。キサンチンオキシダーゼの基質であるハイポキサンチンの大量が、虚血で誘因されたプリンヌクレオチド崩解によって形成される。他の源のスパーオキサイドラジカルは、虚血障害組織に誘因された活性化白血球、Ｑ ₂が副生物であるプロスタグランジン合成、虚血中に還元型で蓄積された各種化合物の自己酸化であろう。再還流に伴う虚血に関する知見は、潜在的に重要な臨床上の応用を示す。 ＥＣ−ＳＯＤのようなＳＯＤまたはこの発明のポリペプチド及び／または酸素ラジカル対する他の保護因子と血栓崩解因子の例えば組織プラスミノーゲン活性因子の同時投与により、心臓梗塞に関連した組織の再還流によって優れた効果を得ることが可能であろう。 ＳＯＤ実験の結果は、心臓手術及び心臓移植に関連しての応用が可能であることも示している。同様に、再還流を併った腎臓虚血に関してＳＯＤを使用した結果が、ＳＯＤは、腎臓移植や皮膚、肺、肝臓、膵臓、骨組織の移植のような他の器官に関して使用しうることを示す。虚血性脳疾患は他の可能な症例である。火傷、免疫複合物形成や主要組織障害のような場合に、好中性白血球が肺に蓄積される。補体活性化（Ｃ５ａ）は、蓄積を仲介することが多いとみられる。白血球が活性化され酸素ラジカルを放出するとみられ、これによって、例えば脳管透過性の増大や肺浮腫（成人呼吸病）で特徴付けられる肺障害を生ずる。いくつかの動物モデルで、ＳＯＤと他の酸素ラジカルスカベンジャーで肺障害の保護効果を示すことが分っている。中枢神経系に関して外傷脳浮腫についてＣｕＺｎ ＳＯＤの保護効果が分っている。エンドスリウム由来の脈管弛緩因子（ＥＤＲＦ）は、スーパーオキサイドに非常に鋭感であり、ＳＯＤの投与はその作用を増加する。スーパーオキサイドラジカル産生は、生体の多くの環境下で起ることができ、血管収縮の組織還流減少の原因となりうる。 ＳＯＤ の投与はこのような血管収縮を和らげることができ、血小板安定化のようなＥＤ ＲＦの他の効果を増強できると思われる。血圧の急性でシビアーな上昇は、脳細動脈の機能的及び形態的異常を来す。プロスタグランジン合成阻害剤とスーパーオキサイドジスムターゼは、この異常を保護すると考えられる。スーパーオキサイド放出が検出できる。モデルの精密な分析により、スーパーオキサイドラジカルが、プロスタグランジン合成中に副生物として形成される結論に達している。この結果は、プロスタグランジン合成中に放出されたスーパーオキサイドラジカルによる組織障害が他の病理的状況で起ることがあり、かつＳＤＤが保護作用を奏することができることを示唆している。全身系紅斑性狼傷、全身系硬化症、リウマチ性関節炎のような多くのタイプの自己免疫病で、リンパ球で染色体破壊の頻度の増加が例証されている。細胞の新生物転換は、通常２つのフェーズ、すなわち、プロモーションを併ったイニシエーションに分けられる、イニシエーションをイオン化照射、ブレオマイシン、ミゾニダゾール及び他のニトロイミダゾールで起した生体外モデルで、 培地にＳＯＤの存在することにより腫瘍転換が効果的に阻止されている。 ＳＯＤ が開始物質への暴露中に存在することは必要でなく、これは酵素が続くプロモーション段階を阻止することを示すとみられる。キサンチン＋キサンチンオキシダーゼの非毒性用量で細胞の発育を促進する。 ＳＯＤまたはＳＯＤ＋カタラーゼの添加はこの効果を阻止する。ホルボール（phorbol）エステルは、公知の促進物質である。皮膚腫瘍を、ベンズアントラセンで開始し、ホルボールエステル（ＴＰＡ）の適用をして誘因させたモデルで、ＳＯＤ活性を有する脂質親和性銅コンプレックスで局所処置すると腫瘍形成が強く減少した。その結果、少なくともある場合に、スーパーオキサイドラジカルが腫瘍形成の促進をし、ＳＯＤがこの効果を防御しうることを示す。酸素ラジカルが、ブレオマイシン、アドリアマイシン、アロキサン、６−ヒドロキシドーパミン、パラクアート、ジヒドロキシフマル酸、ニトロフラントインヤストレプトゾトキシンのような多数の毒性物質の障害効果に寄与すると思われる理由がある。ラジカル形成が細胞外腔で行われる場合に、注射した保護酵素により防御することが可能である。かくして、ＳＯＤは、生体外と生体内でアロキサンの糖尿病発生活性（膵臓でのβ−細胞を障害する）を保護できる。従って、 アロキサンの損傷効果は、スーパーオキサイドラジカルによるかまたはそれから誘導された他の酸素ラジカルに仲介されるとみられる。真性糖尿病の場合に、潜在的に酸素ラジカルを形成できる炎症細胞によるランゲルハンス島での浸潤がある。そのため、真性糖尿病の最初の徴候時に、ＥＣ−ＳＯＤのようなＳＯＤ類をまたはこの発明のポリペプチドを注射してβ−細胞を保護することが考えられる。組換えＥＣ−ＳＯＤＣは、ＣｕＺｎ ＳＯＤより、これら２ つのＳＯＤを平行テストした疾患モデルでより有効であることが分った。かくして、組換えＥＣ−ＳＯＤは、再還流ラット心臓で酸素フリーラジカルの濃度を減少することが示唆された。 ｒＥＣ−ＳＯＤのフリーラジカル濃度の減少効果は、 少なくとも、ＣｕＺｎ ＳＯＤと同程度と結論された。その上、組換えヒトＥＣ −ＳＯＤＣは、虚血と２４時間の再還流に付したラットでの心筋障害を減少することが分った。この発明の注射剤でのポリペプチドの投与量とタイミングは、ヒト血管中の酵素の半減期による。ウサギでは約１５時間ほどである。しかし、ヒトでの半減期は恐らくより長い。一次動力学と３６時間の半減期を想定すると、８７ｍｇの当初注射後に３５ｍｇの１日当り注射は、当初注射後と同じ濃度に達するであろう。この発明のポリペプチドの治療上の有用性は、治療される特定の病気によって変る。細胞表面への強い結合が有利であるとき、ＥＣ−ＳＯＤＣまたはより強いヘパリン親和性を有する発明のポリペプチドが、例えば、器官移植に、また発明のポリペプチドが炎症器官に注射されるならば最も有用であろう。他の症状では、僅かに減少した親和性を有するポリペプチド、例えばポリペプチドＴ２１６のもののように、より制限されたヘパリン親和性が有利であろう。再還流時間が正確に予測できない事情（例えば冠状動脈または他の器官の動脈の血栓崩解）では、再還流前に注射したＥＣ−ＳＯＤＣのような強い結合剤は、身体の周りの内皮に堅く結合し、再還流で再還流した器官領域を直ちに保護するのに殆ど役立ないであろう。親和性が僅かに減少したポリペプチド、例えばここに記載のポリペプチドＴ２ １６は、この状況で、血漿板に比較的高い濃度で存在し、なお内皮を結合し、器官の結合部位間に急速に再分布されるとみられる。 ０．５５Ｍまたはそれ以上のＮａＣｌ濃度でヘパリン−セファロースカラムから溶離液になる（実施例６で条件下）大きさのヘパリン親和性を有するＥＣ−ＳＯＤ変異型のみが、生体内で内皮に結合するであろう。このような変異型は、ある程度しかし変動する程度の細胞表面結合が価値する症状に有利であろう。最後に、生体内でヘパリンスルファートを明白に結合しない変異型、ＡタイプとＢタイプは、血漿または間質液層での高いＳＯＤ活性が重要なとき有用であろう。局所治療は、上で記載したこの発明のポリペプチド組成物のはるかに少量が恐らく必要とされよう。現在では、４〜８ｍｇのＣｕＺｎ ＳＯＤが、関節炎の治療に一週間に一度関節内に投与される。より高い分子量を有するＥＣ−ＳＯＤは長時間、関節に残存するとみられる。従って類似の治療プロトコールまたはできるならばより低い量が恐らく適当であろう。天然ＥＣ−ＳＯＤのスーパーオキシド不均化性質を有するこの発明のポリペプチドは、さらに、化粧品で、例えば皮膚老化の防止、照射障害の防止に使用できる。そのポリペプチドは、リポゾーム組成物であってもよい。図の説明 図１は、天然ＥＣ−ＳＯＤと１２のＥＣ−ＳＯＤ変異体のＣ端末ｃＤＮＡ配列とアミノ酸配列。図２は、組換えＷＡＰ／ＢＣ−ＳＯＤ遺伝子の構造と、ＥＣ−ＳＯＤ形質転換マウスのサーザン分析による同定。 Ａ． ＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ導入遺伝子の構造。組換えヒトＥＣ−ＳＯＤトランスジエニック動物の乳腺への直接発現に、ハイブリッドＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ遺伝子、ｐＳ１７２が構築された。この組換え遺伝子は、ヒトＥＣ−ＳＯＤｃＤＮＡのフロントに転写しかし末翻訳ＷＡＰ配列の最初の２４ｄｐを含有する約２．３ｂｐの上流制御配列からなる。 ｃＤＮＡの下流に、第３エキソンに局在するＳＡ１Ｉ部位から最後のエクソンの約１．６ｋｂ ３'に局在するＥｃｏＲＩ部位に延びる約４ｋｂのＷＡＰゲノムフラグメントを挿入した。 Ｂ．組込みＷＡＤ／ＥＣ−ＳＯＤ導入遺伝子のサーザンブロト分析。各動物からのテールＤＮＡ１０μｇをｓａｍＨＩで制限し、１％アガロースデルで電気泳動し、膜に移送し、ＥＣ−ＳＯＤの３２Ｐ−ラベル化プローブにハイブリッド化する。 １．８ｋｂのハイブリッド化バンドは、ＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮ Ａと３'ＷＡＰ配列を含有する。レーン１は、コントロールでレーン２〜１５はそれぞれ動物を表わす。図３は、出産１１日後の授乳メスのライン＃６８でのＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ ｍＲＮＡ発現についての組織分布Ａ）各種組織からの全ＲＮＡの１０μｇをアガロース−ホルムアルデヒドゲル上電気泳動し、ジーンスクリニングプラス膜（Gene Screen Plus membrances）（ニューイングランドヌクレアー）に移送し、３２Ｐ−ラベルＥ Ｃ−ＳＯＤ ｃＤＮＡプローブでハイブリッド化した。 ＲＮＡハイブリッド結果は１ｋｂ重要ＥＣ−ＳＯＤ ｍＲＮＡ種の授乳乳腺での発現を示す。非トランスジエニック動物から作ったＲＮＡへのハイブリッド化は観察されなかった。組織は、乳腺（Ｍｇ）、肝臓（Ｌｉ）、腎臓（Ｋｉ）脾臓（Ｓｐ）、心臓（Ｈ ｅ）、肺（Ｌｕ）、唾腺（Ｓｇ）と脳（Ｒｒ）であった。 ＲＮＡラダーの共電気泳動で測定したｋｂでのＲＮＡサイズを左に示す。 Ｂ）形質転換ライン＃６８とコントロールとの乳腺ＲＮＡのノーザンプロットをマウスＷＡＰエキソン３とエキソン４プローブでハイブリッド化した。これは内因性ＷＡＰ ｍＲＮＡと組換えＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ ｍＲＮＡに共に同程度にハイブリッド化する。内因性ＷＡＰ ｍＲＮＡレベルは、組換えＷＡＰ／ＥＣ− ＳＯＤ ｍＲＮＡのレベルより有意に高いことが分かった。 β−ラクトグロブリン／ＥＣ−ＳＯＤ形質転換ラインは、ｍＲＮＡ発現を分析されなかった。図４は、ライン＃６８の形質転換マウスからの乳で生産されたヒトＥＣ−ＳＯ Ｄの免疫プロット。電気泳動、移送と展開は、材料と方法で記載のごとく行った。杓４００ｍｇのＥＣ−ＳＯＤを各レーンに用いた。レーン１と６：分子量マーカー（１１６．５ 、８０、４９．５、３２．５、 ３７．５と１８．５ｋＤａ）。レーン２：ＣＨＯセルで生産した組換えＥＣ−ＳＯＤ。レーン３〜５：生産後４日、１０日、１８日にそれぞれ採取した乳の乳漿フラクション。図５はライン＃６８の形質転換マウスからの乳中でのＥＣ−ＳＯＤ生産を授乳中続けた。組換えＥＣ−ＳＯＤレベルをＥＬＳＡとＳＯＤ活性分折で両者で測定した。これらのパラメータのスケールは、天然のＣＨＯ生産組換えヒトＥＣ−Ｓ ＯＤの比活性（８．６ｎｇ／Ｕ、参照１３）と同じ比活性のＥＣ−ＳＯＤが、蛋白の量と等しい高さの酵素活性のカラムを形成するように選定された。このカラムはＥＬＩＳＡ濃度を点線カラムは活性を示す。乳サンプルは毎日指示のように採取させた。図６はヘパリン−セファロース上での乳由来組換えＥＣ−ＳＯＤの分離分析。約１８００ｎｇのＥＣ−ＳＯＤを含有するライン＃６８からの乳を、材料を方法の部に記載のごとき、ヘパリン−セファロースカラム（−０−０−）、（…… ）ＮａＣｌの傾斜に適用し分離した。図７はマウス乳からの組換えヒトＥＣ−ＳＯＤについてウサギ中での血漿クリアランス。図は、材料と方法で記載のごとく、ウサギに静注した形質転換マウスの乳で生産されたＥＣ−ＳＯＤの血漿での時間経緯。予期血漿濃度を、注射量と１２５エーアルブミンで測定した血漿容量から計算した。実験は、大量のヘパリンの静注１（△）、 ５（■）または２４（○）後に収量し、２、５及び１５分後に血液サンプルを採取した。実施例 次の実施例はこの発明を例証するもので限定を意図しない。発明の発現系の構築とその分子生物学敵特性化には、組換えＤＮＡの技術で一般に知られた標準法を使用する。特に断らない限り、使用した方法は、Sambrook ら１９８９〔７０〕とAusubelら１９９１〔７１〕に記載のものである。定義ＤＮＡのハイブリッド形成 ＤＮＡ、例えばニトロセルロースフィルター上に存在を、２×ＳＳＣ〔１×Ｓ ＳＣ＝０．１５ＭＮａＣｌ、０．００１５ＭＮａ ₃ −シトレート、ｐＨ７．０〕 に湿潤し、予め加温（６７℃）の予備ハイブリッド溶液を有する熱シールプラスチック袋に入れ、袋をゆっくり振盪する。溶液を、予め加温した（６７℃）ハイブリッド液と交換し、放射性プローブを、添加し、６７℃で１８時間ハイブリッド形成を行う。袋をゆっくり振盪して、液体のニトロセルロスフィルター上での一定の動きを保障する。ハイブリッド形成後、洗浄手順を行う。放射性プローブは、Sambrookら〔７０〕に記載のような公知法を使用し、ＳＥ Ｑ ＩＤ Ｎｏ１に示したＤＮＡ配列またはその一部、特にアミノ酸１−２１０ に相当するヌクレオチドのようなコード部分または上記のＤＮＡ配列の有動サブシーケンスに基づき作った。予備ハイブリッド形成液とハイブリッド形成液は、１０×デンハード（Denhar dt）、４×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、１０μｇ／ｍｌポリＡ、分折される変性Ｄ ＮＡの５０μｇ／ｍｌと変性（加熱）放射性プローブが用いられる。フィルターを予備加温（６７℃）液（１０×デンハード、２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ）で２×１５分洗浄、同じく予備加温液（１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ）で４×１５ 分洗浄した。フィルターを空気乾燥し、ビターラップで覆い、Ｘ線をフィルターに強調スクリーンを用いるか用いずして３時間〜３週間露光した。実施例１ 導入遺伝子（transgenes）の構築 ３つのベクター（ｐＳ１７２、ｐＳ３１５及びｐＳ３８７）を構築した。ヒトＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮＡ［１２］を、１３９６ｂｐのＥｃｏＲＩフラグメントとしてｐＵＣ１８中にサブクローン化した。 ｃＤＮＡの５'末端を、出発コドンの３２ｂｐ上流にＨｉｎｄIIIリンカーを挿入することによって修飾し、ｃ ＤＮＡの３'末端を、翻訳終止点の下流にＳａｌＩリンカーを挿入することによって修飾した。 ＷＡＰプロモータの制御下でヒトＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮＡを導入するのを促進するために、マウスのＷＡＰ遺伝子［３９］を含む７．２ｋｂのＥ ｃｏＲＩフラグメントを保有するプラスミドをＫｐｎＩで消化し、ＨｉｎｄIII リンカーを挿入した。得られたプラスミドをＨｉｎｄIIIとＳａｌＩで消化し、 ＷＡＰ遺伝子のエキソンＩにおけるＫｐｎＩとＷ ＡＰ遺伝子のエキソンIIIに位置したＳａｌＩとの間の配列を除去した。次いで、このフラグメントをＨｉｎｄIII／ＳａｌＩヒトＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮＡフラグメントと結合させた。次いで、得られたベクターｐＳ１７２をＥｃｏＲＩで消化し、約５．９ｋｂのフラグメント（図２）を単離し、マウスの胚に注入する前に電気溶出によって精製した。 ｐＳ１７２の変異体も生じた。このベクターｐＳ３１５は、約４．５ｋｂのより長い５'ＷＡＰを有している。 ＥＣ−ＳＯＤの翻訳開始点を、マウスのＷＡＰ 遺伝子のエキソンＩにおけるＫｐｎＩ部位の下流に直接挿入した。このＫｐｎＩ 部位は、ＷＡＰの翻訳開始点のちょうど上流に位置している。 ＷＡＰ／ＥＣ−Ｓ ＯＤ組換え遺伝子を単離し、電気溶出によって精製し、下記のように注入した。ヒトＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮＡの前に１．８ｋｂのヒツジβ−ラクトグロブリンの上流調節配列を含む第三の発現ベクター変異体を構築した。ヒツジβ−ラクトグロブリンプロモーターフラグメント、ＢａｍＨＩ／ＰｖｕIIフラグメントとしてＢａｍＨＩ／ＳｍａＩ消化ｐＵＣ１９中にクローン化した。次いで、このプラスミドから、プロモーターフラグメントを１．８ｋｂのＨｉｎｄIII／ＫｐｎＩ （部分消化）フラグメントとして単離した。次いで、このβ−ラクトグロブリンプロモーターフラグメントを、開始コドンの前にＫｐｎＩ部位を挿入することによって修飾されたヒトＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮＡに結合させた。 ＥＣ−ＳＯＤ終止コドンの下流に、４．６ｋｂのマウスＷＡＰ ゲノムフラグメントを挿入し、ｍＲＮＡプロセシングシグナルを得た。この４． ６ｋｂのＷＡＰフラグメントは、最初のエキソン中のＫｐｎＩ部位（この部位はＳａｌＩに変えられた）から最後のエキソンの約１．６ｋｂ下流に位置したＥｃ ｏＲＩ部位まで延びている。得られた発現ベクターｐＳ３８７からβ−ラクトグロブリン／ＥＣ−ＳＯＤ／ＷＡＰフラグメントを単離し、注入した。乳汁タンパク遺伝子配列は、親切にもＬｏｔｈａｒ Ｈｅｎｎｉｇｈａｕｓｅ ｎ博士から提供された。 注入 ＥｃｏＲＩフラグメント（図２）をプラスミドｐＳ１７２から単離し、注入に用いた。別に、ｐＳ３１５のＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤフラグメントもしくはｐＳ３ ８７のβ−ラクトグロブリン／ＥＣ−ＳＯＤ／ＷＡＰフラグメントを単離し、注入した。供与メスマウスをスーパー排卵（superovulation）させるために５ＩＵ の妊馬血清性性腺刺激ホルモンとその４８時間後に５１Ｕのヒト漿膜性腺刺激ホルモンで供与メスマウスを感作した後得られたＣ５７Ｂ１／６ＪｘＣＢＡ−ｆ２ もしくはＣ５７Ｂ１／６ＪｘＤＢＡ／２Ｊ−ｆ２胚の前核に、単離したフラグメントを注入した。 Ｃ５７Ｂ１／６ＪｘＣＢＡ−ｆ１動物は、Ｂｏｍｈｏｌｔｇａ ａｒｄ Ｂｒｅｅｄｉｎｇ ａｎｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｒｅ Ｌｔｄ ． （Ｒｙ．デンマーク）から得られた。注入は、ナリシギ（Narishigi）の水力マイクロマニピュレーターとニコン（Nikon）の倒立顕微鏡［４１］を用いて行った。注入後、偽妊娠のＣ５７Ｂ１／６ＪｘＣＢＡ−ｆ１受容体に胚を移植した。 結果トランスジェニックマウスの乳腺に組換えヒトＥＣ−ＳＯＤを直接発現させるために、ハイブリッドＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ遺伝子、ｐＳ１７２を構築した。この組換え遺伝子は、ヒトＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮＡの前に、転写されるけれども翻訳されないＷＡＰ配列の最初の２４ｂｐを含む約２．３ｋｂの上流調節配列を含んでいる。 ｃＤＮＡの下流に、第三のエキソンに位置したＳａｌＩ部位から最後のエキソンの約１．６ｋｂ３'に位置したＥｃｏＲＩ部位まで延びている約４ｋ ｂのＷＡＰゲノムフラグメントを挿入した（図２Ａ）。 ＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ形質転換動物を発生させるために、１７８個の１細胞期の注入卵を７匹の育て親に移植し、１９匹の新生マウスを得た。 １４匹の動物を分析し、５匹のマウスがＷ ＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ配列を保有していることが、ＰＣＲ分析により同定された（ 創始動物）。注入ＤＮＡの存在と完全さをサザンブロット分析により確認した（ 図２Ｂ）。創始動物のうちの３匹はメスで、２匹はオスであった。 １匹のメスの創始動物を除いた。創始動物を繁殖させた。乳を分泌するメスが、その系統の全てから発生した。 β−ラクトグロブリン／ＥＣ−ＳＯＤ構築物を１６０個の卵に注入し、それらを１６匹の育て親に移植した。それによって２８匹のマウスが生まれ、その２８ 匹のマウスを分析した。これらのうちで、３匹のマウスが形質転換していることが同定され、その３匹のマウスにおける組換えタンパクの発現を分析した。 結論組込まれたＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ遺伝子を有する５系統のトランスジェニックが同定された。そのような動物の乳汁中に、活性組換えＥＣ−ＳＯＤが得られた。組換え遺伝子の発現は、乳腺において優先的に見られた。 β−ラクトグロブリン／ＥＣ−ＳＯＤハイブリッド遺伝子が、３系統のトランスジェニックマウスに組込まれた。この構築物は、乳腺において非常に低レベルのヒトＥＣ−ＳＯＤの発現を仲介することがわかった。 β−ラクトグロブリン／ＥＣ−ＳＯＤトランスジェニックマウス由来の乳汁中の活性ヒトＥＣ−ＳＯＤのレベルは１０ｎｇ／ml 以下であったが、ＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤハイブリッド遺伝子によって仲介されたレベルは、０．７mg／mlに及んだ。組換えＥＣ−ＳＯＤ遺伝子の発現レベルとコピー数との間には、相関性は観察されなかった。このことは、他の試験と一致している［４８、４９］。実施例２ 導入遺伝子の初期同定組込まれた導入遺伝子を有するマウスを、動物の生後３週間目に得られた尾部の生検材料からのＤＮＡのＰＣＲ分析により同定した。生検物を、１Ｍの尿素、５０ｍＭのトリス塩酸塩ｐＨ８．０、０．１Ｍの塩化ナトリウム、０．５％のＳＤＳ、５ｍＭのＥＤ ＴＡ及び２００mg／mlのプロテイナーゼＫを含む０．６mlの尿素溶菌バッファー中でインキュベートした。サンプルを３７℃で１晩インキュベートした。 ＷＡＰ 配列に相補的なプライマー（５ ＣＴＧＴＧＴＧＧＣＣＡＡＧＡＡＧＧＡＡＧＴ ＴＴＧＴ３'）（配列番号３）、β−ラクトグロブリン配列に相補的なプライマー（５'ＧＣＣＴＧＡＧＧＡＴＧＡＧＣＣＡＡＧＴＧ−３'）（配列番号４）及びＥＣ−ＳＯＤ配列に相補的なプライマー（５'ＧＴＣＣＡＧＣＧＴＧＧＣＣＧ ＡＣＧＧＣＴＧＣＡＣＣＴＧ−３'）（配列番号５）を用いて、５０ｍＭの塩化カリウム、１０ｍＭのトリス塩酸塩ｐＨ８．４、１．５ｍＭの塩化マグネシウム、０．２５ｍＭのｄＮＴＰ、２．５ＵのＴａｑポリメラーゼ（ＢＲＬ、Ｇａｉｔ ｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の中でＲＣＲ分析を行った。陽性の結果を、プローブとしてヒトＥＣ−ＳＯＤ ｃＤＮＡを用いるサザンブロット分析により確認した［４２］。実施例３ 導入遺伝子の発現導入遺伝子の発現を、乳を分泌するメス（ｆ ₀動物もしくはｆ ₀オスの形質転換したｆ ₁子孫のどちらかである）由来のＲＮＡと乳汁を分析することによって評価した。 ＲＮＡの単離と分析乳を分泌する形質転換メスマウスの種々の組織からの総ＲＮＡを単離した［４ ２］。 １０μｇの総ＲＮＡサンプルを、ＭＯＰＳ／ホルムアルデヒドアガロースゲル上で分画し、ジンスクリーンプラスメンブラン（Gene Screen plus membranes）（New England Nuclea r、ボストン、MA）に移し、次いで供給者のプロトコールに従って³² Ｐでラベル化したプローブにハイブリッド形成させた（Amersham、イギリス）。 ＲＮＡハイブリッド形成の結果は、乳を分泌する乳腺において１ｋｂの主要なＥＣ−ＳＯＤ ｍＲＮＡ種が発現していることを示している（図３Ａ）。これは、予測したｍＲＮＡのサイズと一致している。形質転換していない動物から調製したＲＮＡでは、ハイブリッド形成は観察されなかった。組換えＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ発現の組織分布を、形質転換した系統の全く同じ２匹のマスウで調べた。種々の組織から調製したＲＮＡの分析（図３Ａ）により、組換えＥＣ−ＳＯＤの豊富な発現が乳を分泌する乳腺に限定されていることが示された。しかしながら、脳においても低レベルの組換えＥＣ−ＳＯＤの発現が検出された。同じＷＡＰ調節配列を他のヒトｃＤＮＡを直接発現させるために用いた追加の実験では、脳における組換え遺伝子の発現は検出されなかった。形質転換系統＃６８と対照の乳腺ＲＮＡのノーザンブロット物を、内因性ＷＡ ＰｍＲＮＡと組換えＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤｍＲＮＡの両方にハイブリッド形成しているマウスのＷＡＰエキソン４プローブとハイブリッド形成させた。内因性のＷＡＰｍＲＮＡレベルは、組換えＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤｍＲＮＡのレベルよりも有為に高いことがわかった（データは示されていない）。 β−ラクトグロブリン／ＥＣ−ＳＯＤ形質転換系統については、ｍＲＮＡの発現を分析しなかった。実施例４ 乳汁収集マウスを１ｇ体重当たり０．０１７mlのアベルチン（２．５％）で麻酔し［４ １］、乳汁を収集する１０分前に０．２ＩＥのオキシトシン（Partocon、Ferrin g、Lund、スウェーデン）を腹腔内に投与した。連続的な吸引によって冷却した１．５mlのエッペンドルフチューブに乳汁を集める乳汁装置を用いて、乳汁を収集した。収集後、すぐに乳汁を−７０℃で凍結した。実施例５ マウス乳汁中のＥＣ−ＳＯＤの測定 トランスジェニックマウスにおいて産生されたＥＣ−ＳＯＤの部分精製マウスから収集した乳汁を精製水で１０倍希釈し、その後８００×ｇで５分間遠心分離した。表面の脂質相を注意深く除去し、上澄を集めた。脱脂乳を５０ｍ Ｍのリン酸ナトリウム、０．５Ｍの塩化ナトリウム、ｐＨ７．０（バッファーＡ ）で１：１希釈し、その後天然のヒトＥＣ−ＳＯＤに特異的なモノクローナル抗体が結合したカラムにアプライした。カラムをバッファーＡで洗浄し、５０ｍＭ のＡＭＰ−ＨＣｌ、１ＭのＫＳＣＮ、ｐＨ９．０で溶出させた。溶出液を限外濾過し、精製水に移し、−２０℃で凍結保存した。集めたフラクションのタンパク濃度を、Ｂｒａｄｆｏｒｄの方法を用いて測定した［４３］。 ヒトＥＣ−ＳＯＤの酵素結合イムノソルベント検定法（ＥＬＩ ＳＡ）二重の抗体によるサンドイッチＥＬＩＳＡ法を用いて、ヒトＥＣ−ＳＯＤの定量を行った。マイクロタイタプレート（Nunclon;Nunc,Roskilde、デンマーク） を、ウエル当たり１００μｌの溶液（５０ｍＭの炭酸ナトリウムｐＨ９．６中に１６μｇ／mlのポリクローナルウサギ抗ＥＣ−ＳＯＤＩｇＧ抗体を含む溶液）でコートした。室温で２時間インキュベートした後、ウエルをブロッキングバッファー（１０ｍＭのリン酸ナトリウムｐＨ７．４、１４０ｍＭの塩化ナトリウム、 ０．１％（ｗ／ｖ）のツィーン２０及び０．５％のＢＳＡ）で洗浄し、次いで３ ００μｌのブロッキングバッファーで１晩ブロックした。分析のために、必要な場合にはブロッキングバッファーで希釈した５０μｌのサンプルを各ウエルに加え、２時間インキュベートした。次いでウエルをブロッキングバッファーで洗浄し、ブロッキングバッファー中に溶解している３μｇ／mlのモノクローナル抗Ｅ Ｃ−ＳＯＤ抗体Ｂ６，Ｈ６（この抗体はＷＯ８７／０１３８７の実施例１５に記載されており、その実施例に従って作成されたものである）を５０μｌと、ブロッキングバッファー中に溶解しているペルオキシダーゼ結合ウサギ抗マウスＩｇ Ｇ（DAKOPATTS，コペンハーゲン、デンマーク）を５０μｌこの順で加えた。さらに２時間後、ウエルをブロッキングバッファーで洗浄し、次いで１００ｍＭのクエン酸ナトリウムｐＨ５．０中の３．７ｍＭのｏ−フェニレンジアミン及び０ ． ４ｍＭの過酸化水素１００μｌで１０分間展開させた。 ０．５Ｍの硫酸を１００μｌ加えた後、４９２ｎｍの吸光度をエライザプロセッサーII（Hoechst Behring、Marburg、FRG）で測定した。この検定法は、ヒト臍帯ＥＣ−ＳＯＤ Ｃについて標準化されたものであった。下は０．２５ｎｇ／mlに至るまでのＥＣ −ＳＯＤの濃度を測定することができた。 ＥＬＩＳＡにより測定したＥＣ−ＳＯＤの産生は、形質転換の系統間で大きく異なるが、総体的にはＷＡＰ導入遺伝子において最も高い（表１）。系統＃６８ が、非常に高い生産性（およそ０．７mg／ml）を示した。

ヒトＥＣ−ＳＯＤの存在に関するＳＤＳ−ＰＡＧＥとイムノブロッティング Ｌａｅｍｍｌｉによって記載された不連続バッファー系に基づいて、ＳＤＳゲルを超小型電気泳動ユニット（ファルマシア−ＬＫＢ）で泳動させた［４６］。 一定電圧（０．８ｍＡ／ｃ ｍ

² ）下のトランスブロットユニット（バイオラッド、Ｒｉｃｈｍｏｎｄ、ＣＡ ）を用いて、４８ｍＭのトリス、３９ｍＭのグリシン、１．３ｍＭのＳＤＳ、２ ０％のメタノール中でゲルをブロッティングした。 免疫用の天然タンパクとアフィニティー精製用の固定化ＥＣ−ＳＯＤを用いてウサギで作成したポリクローナル抗体を用いて、ＥＣ−ＳＯＤを検出した。 アルカリホスファターゼ抗ウサギＩ ｇＧ（Dakopatts、コペンハーゲン、デンマーク）を二次抗体として用いた。 乳汁中のヒトＥＣ−ＳＯＤ存在を、ＳＤＳ／ＰＡＧＥとイムノブロッティングにより分析した（図４）。 この方法によって、ＷＡＰ／ＥＣ−ＳＯＤ系統＃６８ 由来の乳汁中にはヒトＥＣ−ＳＯＤが検出されたが、他の系統由来の乳汁や形質転換していない動物由来の乳汁中にはヒトＥＣ−ＳＯＤは検出されなかった。 実施例６

トランスジェニックマウスにおいて産生されたＥＣ−ＳＯＤの特徴付け天然のＥＣ−ＳＯＤとＣＨＯ細胞において発現した組換えＥＣ−ＳＯＤは、Ｓ ｙｍｂｉｃｏｍ ＡＢ（Ｕｍｅａ）スウェーデン）から得たものである。

ＥＣ−ＳＯＤ活性の定量サンプルのスーパーオキシドジスムターゼ活性を、〔４５〕においてわずかに修正を加えたような、ＫＯ

₂を用いる直接分光光度法（direct spectrophotometr ic mechod）〔４４〕により測定した。 簡単に言えば、その方法は、アルカリ水溶液中でＯ

₂・

^-の不均化（ 分解）を触媒するＳＯＤの能力を測定することに基づいている。 アルカリ性のｐ Ｈと低いＯ

₂

^-濃度下では、Ｏ

₂・

^-ラジカルは、２４５−２５０ｎｍで最大のブロードな吸光度を利用する一般の紫外分光光度計で試験を行うのに十分安定である。 従って、検定をｐＨ９．５で行い、分光光度計で直接不均化を試験した。 その検定における１単位を、３mlバッファー中０．１秒の速度でＯ

₂・

^-をほぼ不均化する活性として定義する。 これらの条件下で、酵素の１単位は、８．６ｎｇの天然もしくは組換えヒトＥＣ−ＳＯＤ Ｃに対応する〔１３〕。 この検定法は、最初のキサンチンオキシダーゼ−シトクロムＣ検定法〔９〕よりも４０倍感度が良い（すなわち、その単位は、４０倍低い酵素に対応する）。

結 果対照の乳汁におけるＳＯＤ活性は、約１００Ｕ／mlであった。 それが、ＥＣ− ＳＯＤ産生の低い乳汁サンプルにおける活性の増加を確信もって見分けられなかった理由である。 しかしながら、系統＃６８においては、乳汁中のＳＯＤ活性は非常に高く（図５）、比活性（Ｕ／ｎｇＥＣ−ＳＯＤ）は天然ＥＣ−ＳＯＤ及びＣＨＯによって産生される組換えＥＣ−ＳＯＤの比活性と明らかに同一であった〔１３〕。 組換えＥＣ−ＳＯＤの産生は、泌乳の真中安定であった。

サイズ排除クロマトグラフィーによる見かけの分子量の測定 ＥＣ−ＳＯＤの見かけの分子量を、ＯＫＢのＨＰＬＣ装置（ファルマシアＬＫＢバイオテクノロジー社）を用いて４℃でゲルクロマトグラフィーにより測定した。 ヒトＥＣ−ＳＯＤ変異体を含むサンプルを、０．１５Ｍ の塩化ナトリウムをふくむ１０ｍＭのリン酸カルシウムｐＨ７．４（流速１９． ８ml／ｈｒ）で平衡化させたセファリルＳ−３００カラム（ファルマシアＬＫＢ バイオテクノロジー社）（１．６×８９ｃｍ）にアプライし、０．１５Ｍの塩化ナトリウムを含む１０ｍＭのリン酸カリウムｐＨ７．４（流速１９．８ml／ｈｒ ）で溶出させた。 流出液を１．３５mlずつのフラクションとして集め、ＥＣ−Ｓ ＯＤ含量を上記のようにＥＬＩＳＡによって測定した。 カラムを、ＩｇＧ１５６ （ｋＤａ）（シグマケミカルコーポレーション、St．Louls、アメリカ）、ウシ血清アルブミン（６７ｋＤａ）（シグマケミカルコーポレーション、StLouis、 アメリカ）及び炭酸脱水酵素（２９ｋＤａ）（シグマケミカルコーポレーション、StLouis、アメリカ）を用いて調整した。 溶出液の容量に対するキャリブレーターのｌｏｇ分子量をプロットすることによって検量線を作成した。 トランスジェニックマウス由来の乳汁中に産生されたＥＣ−ＳＯＤは、１５５ ｋＤａの分子質量に対応する位置で、セファクリルＳ−３００サイズ排除クロマトグラフィーカラムから溶出した（データは示されていない）。 マウス乳汁由来の組換えＥＣ−ＳＯＤサブユニットの見かけの分子質量は、ＣＨＯによって産生される組換えＥＣ−ＳＯＤと同様であった。 いくつかのわずかな違いが観察された。 平衡してクロマトグラフィーにかけられたヒト血漿中の天然ＥＣ−ＳＯＤとＣＨＯによって産生される組換えＥＣ−ＳＯＤは、実質的に同じ溶出液量で溶出した。 トランスジェニックマウス由来の組換えＥＣ−ＳＯＤは、およそ５％の四量体よりも高い多量体（ｍｅｒｓ ）タンパクを示した。 この値は、天然のヒトＥＣ−ＳＯＤの値には近いが、ＣＨ Ｏ細胞由来の組換えＥＣ−ＳＯＤの値よりもかなり低い〔４７〕。 二量体の相対的な量は、乳汁由来のＥＣ−ＳＯＤにおいてより高い（図４）。 泌乳の後期からのサンプルにおいては、多量体の割合も増加した。

グリコシル化のパターン ＣＨＯ細胞によって産生された組換えＥＣ−ＳＯＤと、マウス乳腺によって産生された組換えＥＣ−ＳＯＤと、天然のヒトＥＣ−ＳＯＤをＰＡＳ染色したら、 それらが酸化可能な炭水化物成分を含んでいることがわかった。 レクチン結合特性を分析することにより、グリカン類の特徴付けを行った（表２）。 レクチンリンクキット（Gebzyme，Cambridge，MA）を用いて、異なるＳＯＤのレクチンへの結合を分析した。 これは、以下のビオチニル化（biotinylated）レクチンを含んでいた：コンカナバリンＡ（ｃｏｎＡ）、コムギ胚芽凝集素（ＷＧ Ａ）、ヒマ凝集素（Ricinus communis agglutinin）（ＤＳＡ）、ヨウシュチョウセンアサガオ凝集素（Datura stramonium agglutinin）（ＤＳＡ）及びSambuc us nigra凝集素（ＳＮＡ）。 まずタンパクをＳＤＳ−ＰＡＧＥで泳動させ、その後電気ブロットし（electrobotted）、異なるレクチンを用いて展開した。 ＣＨＯ由来の組換えＥＣ−ＳＯＤとマウス乳汁由来の組換えＥＣ−ＳＯＤはともに、天然のタンパクよりも少ないＲＣＡを結合させた。 このことは、天然のタンパクが、末端のガラクトース（これは、組換えタンパクにおいては欠失しているかまたはシアル酸によってブロックされている）を含んでいる可能性があることを示している。 ３種類のＥＣ−ＳＯＤは、ＳＮＡ結合に関して異なっている。 乳汁由来の組換えＥＣ−ＳＯＤのみがこのレクチンに結合することがわかった。 このことは、トランスジェニックマウスにおいて産生されたＥＣ−ＳＯＤが、ａ ２，６（またはａ２，３）部位のガラクトースに付加した末端シアル酸残基を有していることを示している。

ウサギにおけるＥＣ−ＳＯＤの血漿クリアランスマウス乳汁由来の組換えＥＣ−ＳＯＤを、５０ｍＭのリン酸ナトリウムｐＨ７ ． ４で平衡化させたヘパリン−セファロースを用いるクロマトグラフィーによって部分的に精製した。 同じバッファー中の塩化ナトリウムグラジエントにより、 完全なＥＣ−ＳＯＤを溶出させた。 中央の２／３の高ヘパリンアフィニティーフラクション（図６参照）を集め、血漿クリアランス試験に用いた。 体重１kg当たり、０．２％ウシ血清アルブミンを含む５０ｍＭのリン酸カリウムｐＨ７．４中に溶解させた約１０μｇののＥＣ− ＳＯＤを、チンチララムウサギ（chinchilla ram rabbits）（体重３〜４kg）の耳静脈に注射した。 血液サンプルを、図７に示した時間に抗凝固剤としてＥＤＴ Ａを含むチューブ中に採取した。 ヘパリン（２５００ＩＵ／kg体重）を静脈内注射し、その２、５及び１５分後に血液サンプルを採取することによって、１、６ または２４時間目に実験を終了した。 血漿容量は、３４〜３８ml／kg体重の間で様々であった。 ウサギは１回だけ使用した。 静脈内注射後、乳汁由来の組換えＥＣ−ＳＯＤは血漿から急速に消失（約９７ ％まで）した（図７）。 この消失は明らかに内皮細胞表面のグリコカリックス中のヘパラン硫酸プロテオグリカンへの結合に基づくものである〔３、４、１５、 １７、１８〕。 その後の衰退はゆっくりであった。 １、５及び２４時間目に大量のヘパリンを注射することによって、酵素は血漿中に急速に遊離した。 この挙動は、ＣＨＯによって産生される組換えＥＣ−ＳＯＤで先に見い出された挙動と非常に類似している。 しかしながら、ＣＨＯによって産生されるＥＣ−ＳＯＤは、幾分よりゆっくりした循環からの消失を示した。

ヘパリン−セファロールによるＥＣ−ＳＯＤの分析的分離ファルマシアのＦＰＬＣ装置を用いて、室温でのヘパリン−セファロースクロマトグラフィーによりＥＣ−ＳＯＤを分離した。 カラムは、平衡化バッファー及び溶出液として、１５ｍＭのカコジル酸ナトリウム／５０ｍＭの塩化ナトリウム、ｐＨ６． ５０とともに１mlのヘパリン−セファロース（Pharmacia Laboratory Separatio n Division、Uppsala）スウェーデン）を含んでいた。 溶出液における２８０ｎ ｍの吸光度をモニターした。 サンプル５ml／ｈｒでアプライし、２８０ｎｍの吸光度がベースラインに近くなったとき、バッファーにおける塩化ナトリウムの直線勾配（０−１ｍｏｌ／ｌ）（９ml／ｈ）により結合成分を溶出させた。 溶出液を０．６５mlずつのフラクションとして集め、酵素結合イムノソルベント検定法（ＥＬＩＳＡ）によってＥＣ−ＳＯＤを測定した。 この方法は、以下に記載のとおりである。 ＥＣ−ＳＯＤの塩素含量を、標準塩素滴定器（American Instrumen t Co．Inc.，Md、アメリカ）を用いて測定した。 アプライする前にフィルトロンオメガ細胞膜濃度システム（Filtron Omega ce ll membrane concentration system）における培地の溶媒を、１５ｍＭのカコジル酸ナトリウム／５０ｍＭの塩化ナトリウム、ｐＨ６．５０に交換した。 一般的に、１ た。 ヘパリンセファロースを用いるクロマトグラフィーでは、トランスジェニックマウスにおいて産生された乳汁由来の組換えＥＣ−ＳＯＤは、約０．５４モルの塩化ナトリウム濃度で溶出する主要なピークを示す。 その濃度は、天然のＥＣ− ＳＯＤやＣＨＯによって産生される組換えＥＣ−ＳＯＤで見られた濃度と同一である〔１９〕（図７）。 しかしながら、減少した異常なヘパリン親和性を有する材料があった。 乳汁中に産生される組換えＥＣ−ＳＯＤは、先に試験した天然の血漿ＥＣ−Ｓ ＯＤやＣＨＯによって産生される組換えヒトＥＣ−ＳＯＤと構造上明らかに同一であった。 サブユニットはＳＤＳ／ＰＡＧＥ−イムノブロッティングによって区別がついたけれども、ゲル排除クロマトグラフィーによる見かけの分子質量は、 区別がつかなかった。 酵素の比活性は、事実上天然のＥＣ−ＳＯＤやＣＨＯによって産生される組換えＥＣ−ＳＯＤの比活性と同一であった。 乳汁によって産生されるＥＣ−ＳＯＤの主要部分は、先に試験したＥＣ−ＳＯＤと同一のヘパリン親和性を示した。 ＥＣ−ＳＯＤのヘパリン結合ドメインは、タンパク分解性の切断（truncation）の影響を非常にうけやすい〔２０〕。 この調査により、マウス乳汁中にタンパク分解活性が存在しているにもかかわらず、そのような切断はほんの少ししかおこらなかったことが示された〔５０〕。 レクチン親和性の調査から、全ての試験したヒトＥＣ−ＳＯＤ型、すなわち臍帯由来の天然酵素、ＣＨＯ細胞によって産生された組換え体及びマウス乳腺によって産生された組換え体の間には、オリゴ糖成分に違いがあることがわかった。 しかしながらこの発見は、組換えＥＣ−ＳＯＤが人体中のＥＣ−ＳＯＤに結合して存在しないオリゴ糖成分を含んでいることを、必ずしも示すものではない。 オリゴ糖は、単一の細胞型によって産生されるように、異種であることが知られている〔５１〕。 おそらく、試験した天然の臍帯ＥＣ−ＳＯＤは、繊維芽細胞によって主に産生されるのであろう。 しかしながら、ＥＣ−ＳＯ Ｄは、グリア細胞〔５２〕や平滑筋細胞（末発表）及びおそらくまだ同定されていない他の細胞型によっても分泌されるであろう。 タンパクが人体の異なる細胞型によって産生される場合に、そのタンパクのグリコシル化が大きく異なる場合があることは、公知である〔５３〕。 最後に、マウス乳汁由来の組換えＥＣ−ＳＯＤは、ウサギに静脈内注射した後、天然ＥＣ−ＳＯＤやＣＨＯによって産生される組換えＥＣ−ＳＯＤと同様の挙動を示すことがわかった〔１５、１８〕。 血管内皮に急速に結合し、ヘパリンを注射した後急速に遊離した。 おそらく、 マウス乳汁によって産生されるＥＣ−ＳＯＤは、先に試験したＥＣ−ＳＯＤよりもわずかに早く循環から消失したように思われた。 実施例７

ヒトＥＣ−ＳＯＤゲノムＤＮＡのクローニング、配列決定及び体制ヒトＥＣ−ＳＯＤ遺伝子を、ヒトゲノムライブラリーから同定しかつ単離する。 ＥＣ−ＳＯＤゲノム配列を含む組換えファージを

³² Ｐでラベル化したＥＣ−Ｓ ＯＤｃＤＮＡフラグメントにハイブリッド形成させることにより同定する。 これらのラベル化したＥＣ−ＳＯＤ配列は、完全なＥＣ−ＳＯＤｃＤＮＡで、ＥＣＳ −ＳＯＤｃＤＮＡの５'末端と３'末端の両方から単離したフラグメントであり、プローブとして用いられる。 これらのプローブを種々組み合わせて用いることにより、完全な転写領域を含む組換えＥＣ−ＳＯＤ ファージの同定が可能となる。 組換えファージとＥＣ−ＳＯＤ遺伝子に関するこの分析は、ポリメラーゼ連鎖反応実験におけるプライマーとして合成オリゴヌクレオチドを種々組み合わせて用いる点で、まさに改良されたものである。 ヒトＥＣ−ＳＯＤ遺伝子の転写領域を含む同定された組換えファージは、精製されたプラークである。 ＤＮＡを精製ファージから調製し、制限酵素消化とアガロース電気泳動によってＥＣ−ＳＯＤゲノム配列を単離する。 より詳細な制限地図作成、ＰＣＲ分析及び配列分析を行うために、ＥＣ−ＳＯＤフラグメントをｐ ＵＣプラスミド中にクローン化する。 結果は、ＥＣ−ＳＯＤが、ＥＣ−ＳＯＤ読み取り枠に先行する少なくとも１つのイントロンを有していることを示している。 ＥＣ−ＳＯＤ読み取り枠は、１つのエキソン中で連続的なものである。 形質転換動物由来の乳汁における組換えヒトＥＣ−ＳＯＤの高い産生を得るために、ヒトＥＣ−ＳＯＤ遺伝子の転写されるイントロンを含む部分を、乳汁タンパク遺伝子由来の乳房上皮細胞特異的調節配列の転写制御下でベクターに挿入する。 この組換え遺伝子を保有する形質転換動物を、上記のように発生させて同定する。 実施例８

ウシ卵母細胞の試験管内（In vitro）成熟、受精及び培養屠殺場で得られる卵巣の卵胞を吸引することによって、未熟な卵母細胞を大量に得る（４００〜６００／日）。 未熟な卵母細胞を、受精させる前に試験管内で一定時間培養する。 成熟したら、卵母細胞を、成熟した精子かもしくは受精できるようにした精子と試験管内で受精させる。 次いで、受精した卵母細胞の前核に、ヒトＥＣ−ＳＯＤの発現と分泌するコードする導入遺伝子を注入する。 次いで、この試験管内受精とマイクロインジェクションによって得られる受精卵を、卵管組織を用いて調製した培地かもしくは卵管組織を用いてならした培地中で、後期の桑実胚もしくは胚盤胞期まで培養する（５〜６日）。 次いで、この明細書に記載するように、妊娠の均衡を保つために胚盤胞を非外科的に受容ウシ種に移入するかまたは胚盤胞における導入遺伝子の組込みを分析する。 試験管内成熟（ＩＶＭ） 地方の屠殺場で畜殺した後すぐに卵巣を得、卵母細胞を回収する。 別に、卵母細胞を、外科的、内視鏡検査的または経膣的超音波のアプローチによって、生きているウシ種から得る。 いずれの場合にも、卵母細胞を卵巣の卵胞から吸引する（２〜１０mm直径）。 洗浄後、卵母細胞を、成熟培地（例えば１０％ウシ胎児血清が補われたＭ１９９からなる培地）中に置き、３９℃で２４時間インキュベートする〔７２〕。 試験管内受精（ＩＶＦ） 成熟した卵母細胞を、新鮮な精子かまたは凍結品を解かした精子のどちらかと受精させる。 受精のために、まずスイムアップ分離法（Swim-up separation tec hnique）によって運動性を強化した精子の集団を得ることにより、精子を調製する〔７３〕。 次いで、精子の受精能獲得を誘発するために、運動能力のある精子を、ヘパリンが補われた修正タイロード溶液〔７３〕で構成されている受精培地に加える〔７４〕。 受精能獲得は、受精に必要な最終の精子成熟過程である。 精子と卵母細胞を１８時間共培養（co-culture）する。 このＩＶＦ法の有用な特徴は、（精子が凍結品の場合に、）特別な１回射精液のための最適受精条件が定義されれば、矛盾のない再現可能な結果が得られることである〔７３〕。 試験管内培養（ＩＶＣ） マウス、ウサギまたはヒトの卵子の発育を支持する従来の培養系は、８〜１６ 細胞期を過ぎたウシ胚の発育を支持しない。 この問題は、卵管組織で予めならした培地を用いることによって克服された。 卵管によるならし培地は、８〜１６細胞期を過ぎたウシ胚の胚盤胞期までを試験管内で支持するであろう〔６２〕。 Ｃａｍｏｕｓら〔６３〕が、胚を栄養膜組織と共培養したときに２１６細胞まで分割したことを論証するまで、８〜１６細胞のブロックを過ぎたウシ胚を試験管内で培養する試みはなされなかった。 共培養手順は、受精卵から胚盤胞までの発育を支持する同種もしくは異種の卵管の能力に基づいて、卵管組織に及んだ。 このようにして、卵管組織と共培養したウシ胚もしくは卵管組織によってならした培地で、共培養したウシ胚は、試験管内で受精卵から胚盤胞まで発育した〔６２、７５〕。 胚盤胞は、スーパー排卵及び人工受精後に、あるいは未熟な卵母細胞の試験管内成熟（ＩＶＭ）及び受精（ＩＶＦ ）により、この系で産生した。 この方法で産生した胚盤胞は、受容動物に移入した後妊娠を引きおこし、生きている仔ウシが得られた。 得られた結果は以下のようであった。 従って、最初の日の５００個の卵母細胞の収穫から、およそ５５の妊娠が得られることが予測される。 卵管組織の調製共培養及びならし培地 １． 畜殺後または卵管切除術によって卵管を得る。 ２． 完全な卵管をガラススライドで静かに削ることによって内腔組織を収穫する。 ３．１０mlの修正タイロード−ヘペス溶液〔７４〕で組織を５回洗浄する。 ４． 最終の組織ペレットを、Ｍ１９９＋１０％のウシ胎児血清中に、１容量の組織：５０容量の培地の割合で再懸濁する。 ５． 組織懸濁液は、胚の共培養に用いることができる。 ６． 別に、培地を４８時間ならしてもよい：懸濁液を遠心分離した後、その上澄を胚の培地として用いることができる。 ならし培地は、所望により−７０℃で保存することができる。 ならし培地は、胚の培養に十分な強度で用いるべきである（希釈しない）〔７５〕。 実施例９

形質転換ウサギの発生スーパー排卵していないメスのウサギを卵の供与体とする。 交配の１９．５時間後に、それらの卵管から卵を洗い流す。 １匹の供与体当たり平均８〜１０個の卵を回収する。 卵を形態学的に完全であるかどうか分析し、受精させる。 卵は明らかに、肉眼で見える前核を示している。 約７０〜８０％が、マイクロインジェクションに有用であることがわかる。

注 入次いで、ヒトＥＣ−ＳＯＤの発現と分泌をコードする１以上の導入遺伝子を、 受精した卵の前核に注入する。 前核の注入がうまくいったかどうかを、前核が膨らむことによりモニターする。 注入後、大部分が２細胞期に到るまで、卵を数時間培養する。 洗浄、培養及び注入を、仔ウシ血清が補われたリン酸塩緩衝化生理食塩液（Ｐ ＢＳ）からなる培地中で行う。

形質転換卵の移入受容動物は、濾胞刺激ホルモン放出ホルモンを１回皮下注射することによって供与動物と同時性をもたせた処女の育て親である。 ８〜１０個の卵を、偽妊娠育て親の卵管に一般的な麻酔下で外科的に移入する。 腹部の空洞を両側の側腹部の切開によって開き、１０μｌの培地中の卵管の中に卵を移す。 処女の育て親は４〜１２ヶ月である。 受容動物の偽妊娠の割合は、約６０％であり、この値は自然交配で観察される妊娠の割合に相当する。 形質転換動物を、新生ウサギの耳のバイオプシーから抽出したＤＮＡのサザンブロットハイブリッド形成により同定する。 新生ウサギ中に形質転換ウサギがあらわれる総体的な頻度は、約９．５％である。 繁殖力のある全ての形質転換動物を３．５カ月令で交配させると、メンデルの様式でそれらの子孫に導入遺伝子が遺伝することがわかる。

【手続補正書】特許法第１８４条の８ 【提出日】１９９５年６月１３日【補正内容】 請求の範囲１． ヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその変異型をエンコードするＤＮＡ配列からなり、そのＤＮＡ配列は、ハイブリッド遺伝子を有する非ヒト哺乳動物の成人雌の乳腺で発現できるハイブリッド遺伝子を形成するように哺乳動物の乳蛋白をエンコードする遺伝子の調節要素と結合され、従ってそのＤＮＡ配列によってエンコードされたポリペプチドがハイブリッド遺伝子が発現されたとき生産される哺乳動物発現システム。 ２． 乳蛋白をエンコードする遺伝子が、乳漿酸性蛋白（ＷＡＰ）遺伝子、β−ラクトグロブリン遺伝子とカゼイン遺伝子からなる群より選択される請求項１による発現システム。 ３． ポリペプチドの変異型が、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列と少なくとも８５％相同である請求項１による発現システム。 ４． ポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列が、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１に示したＤＮＡ配列またはその一部でハイブリッド化のものである請求項１による発現システム。 ５． ポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列が、少なくとも１つのイントロン配列を含有する請求項４による発現システム。 ６． ポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列が、シグナルペプチドをエンコードするＤＮＡで先行される請求項１による発現システム。 ７． シグナルペプチドが、ヒトＥＣ−ＳＯＤをエンコードするＤＮＡ配列と結合したシグナルペプチドと乳蛋白と結合したシグナルペプチドからなる群から選択される請求項６による発現システム。 ８． 非ヒト哺乳動物が、ウサギ、マウス、ラット、ヤギ、ヒツジ、豚、ラマ、ラクダとウシ種からなる群から選択される請求項１による発現システム。 ９． 変異型が、ヒトＥＣ−ＳＯＤタイプＣに比較して減少したヘパリン親和性を有する請求項１による発現システム。 １０． 変異型が、変異型Ｔ２１６、Ｔ２１５、Ｔ２１３、Ｔ２０９、ＳＡＴ２１ ６、ＳＲＴ２１６、ＳＡ２１９、ＳＡ２２０とＳＡ２１１−２１３からなる群より選択され、前記変異型のＣ−末端配列が図１に示されたものである請求項９による発現システム。 １１． 変異型が、ヒトＥＣ−ＳＯＤタイプＣに比較して増加したヘパリン親和性を有する請求項１による発現システム。 １２． 変異型が、変異型ＳＡ２１６、ＳＡ２１６／２１８とＳＡ２１６／２２０ からなる群から選択され、前記変異型のＣ−末端配列が図１に示されたものである請求項１１による発現システム。 １３． ブタベスト条約の規定により受理番号ＤＳＭ８３３５としてＤＳＭのコレクションに１９９３年６月７日に寄託されたｐＳ１７２と表示した請求項１による発現システムとその寄託発現システムのＤＮＡ配列と異なるＤＮＡ配列を発現する発現システム。 １４． 発現されたＤＮＡ配列が、ＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するポリペプチドをエンコードするＤＮＡ配列になるように少なくとも１つのヌクレオチドが削除、置換または修飾されるかまたは少なくとも１つの付加ヌクレオチドが挿入されていることで寄託システムのＤＮＡ配列から異なるものである請求項１３による発現システム。 １５． ヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列を有するポリペプチドまたは変異型をエンコードするＤＮＡ配列からなりそのＤＮＡ配列が哺乳動物の乳蛋白をエンコードする遺伝子の調節要素と結合しているハイブリッド遺伝子。 １６． 乳蛋白をエンコードする遺伝子が、乳漿酸性蛋白（ＷＡＰ）遺伝子、β− ラクトグロブリン遺伝子またはカゼイン遺伝子からなる群から選択される請求項１５によるハイブリッド遺伝子。 １７． 変異型が、変異型Ｔ２１６、Ｔ２１５、Ｔ２１３、Ｔ２０９、ＳＡＴ２１ ６、ＳＲＴ２１６、ＳＡ２１９、ＳＡ２２０、ＳＡ２１１−２１３、ＳＡ２１６ 、ＳＡ２１６／２１８とＳＡ２１６／２２０からなる群から選択され、前記変異型のＣ−末端配列が図１に示されたものである請求項１５又は１６によるハイブリッド遺伝子。 １８． ＤＮＡ配列が、少なくも１つのイントロン配列からなる請求項１５によるハイブリッド遺伝子。 １９． ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１に示したＤＮＡ配列またはその変異型からなり、そのＤＮＡ配列は哺乳動物の乳蛋白をエンコードする遺伝子の調節因子と結合し、 前記ＤＮＡ配列の発現を仲介しうるものである、ヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１に示したアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその変異型をエンコードするＤＮＡ配列を担持する複製発現ベクター。 ２０． ＤＮＡ配列が、少なくとも１つのヌクレオチドが削除、置換または修飾されているかまたは少なくとも１つの付加ヌクレオチドが挿入されていることでＳ ＥＱ ＩＤ Ｎｏ１に示したＤＮＡ配列と異なる請求項１９による複製発現ベクター。 ２１． 請求項１９又は２０に定義されたベクターを有する細胞。 ２２． 単一細胞性真核細胞または多細胞性有機体からの細胞からの群から選択される請求項２１による細胞。 ２３． 非ヒト哺乳動物由来てある請求項２２による細胞。 ２４． 請求項１〜１２の何れかにクレームした少なくとも１つの発現システムを、非ヒト哺乳動物のゲノムに、下記ポリペプチドをエンコードするＤＮＡが非ヒト哺乳動物の乳腺で発現されるように導入し、乳腺から分泌された乳を採取し、 乳から組換えポリペプチドを回収し、任意に精製することからなるヒトＥＣ−Ｓ ＯＤの生物活性を有するＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２に示したアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその変異型を生産する方法。 ２５． 後記ポリペプチドをエンコードする少なくとも１つのＤＮＡ配列を非ヒト哺乳動物のゲノムに染色体的に導入することからなるヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するアミノ酸配列ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ１を有するポリペプチドまたはその変異型を発現できる形質転換非ヒト哺乳動物を生産する方法。 ２６． 請求項１〜１２の何れかに定義の少なくとも１つの発現システムまたはそのサブシーケンスをその発現システムを哺乳動物の生殖細胞系に導入するように、哺乳動物の受精卵または胚の細胞に注射し、得られる注射した受精卵または胚を成人雌哺乳動物に発育させることからなる請求項２５による方法。 ２７． 発現システムまたはそのサブシーケンスの１〜１０コピーが注射される請求項２４〜２６の何れかによる方法。 ２８． 発現システムまたはそのサブシーケンスの１〜７コピーが注射される請求項２７による方法。 ２９． 注射される発現システムが、ＥＣ−ＳＯＤの２つの異なる変異型をエンコードする少なくとも２つの異なるＤＮＡ配列からなる請求項２７または２８による方法。 ３０． 生殖細胞と体細胞が、非ヒト哺乳動物ゲノムまたはその非ヒト哺乳動物の祖先のゲノムに染色体導入の結果としてヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するアミノ酸配列ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２を有するポリペプチドまたはその変異型をエンコードするＤＮＡ配列を含む形質転換非ヒト哺乳動物。 ３１． 請求項２５〜２８の何れかに定義された方法で作られ、及び前記哺乳動物の子孫である請求項３０による形質転換非ヒト哺乳動物。 ３２． ウサギ、マウス、ラット、ヤギ、ヒツジ、豚、ラマ、ラクダと牛種からなる群から選択される請求項３０又は３１による形質転換非ヒト哺乳動物。 ３３． ヒトＥＣ−ＳＯＤの生物活性を有するアミノ酸配列ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ２ を有するポリペプチドまたはその変異型と乳成分とからなる形質転換非ヒト哺乳動物の乳。 ３４． 乳が請求項３０〜３２の何れかに定義された形質転換哺乳動物から得られる請求項３３による乳。

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